Аналіз впливу алогенних мезенхімальних стовбурових клітин на процес метастазування в мишей C57BL/6 з перещепленою метастатичною карциномою легень Льюіс. Визначення збільшення показника загального об’єму метастазів у тварин контрольної і дослідної груп.
При низкой оригинальности работы "Вплив алогенних мезенхімальних стовбурових клітин на процес метастазування у мишей C57Bl/6 з трансплантованою карциномою легень Льюіс", Вы можете повысить уникальность этой работы до 80-100%
Досліджено вплив алогенних мезенхімальних стовбурових клітин на процес метастазування в мишей C57BL/6 з перещепленою метастатичною карциномою легень Льюіс. Сумарна кількість метастазів розміром 1,0-3,0 мм у тварин дослідної групи становить 52,5 %, тоді як у контролі цей показник - 31,4 %. Застосування МСК у мишей з трансплантованою карциномою легень Льюіс чинить вплив на збільшення показника загального обєму метастазів (?2х= 0,26, р<0,05). стовбуровий клітина метастазування миша легеня Мезенхімальні стовбурові клітини (МСК) відомі як стромальні клітини-попередники, що знаходяться в кістковому мозку, здатні до самооновлення і можуть диференціюватися в мезодермальний клітинний клон, в тому числі клітини кістки, хряща, строми, жирової тканини, сполучної тканини, мязів і сухожилків [2]. В екпериментах на тваринах було виявлено, що застосування ксеногенних МСК, отриманих із жирової тканини людини, у щурів з експериментальною моделлю карциноми Герена призвело до значного збільшення виживаності, а на 21-у добу експерименту було відмічено інгібування росту пухлини на 40 % [9].Застосування алогенних МСК чинить вплив на перебіг метастазування у мишей з трансплантованої карциномою легень Льюїс.
Вывод
1. Застосування алогенних МСК чинить вплив на перебіг метастазування у мишей з трансплантованої карциномою легень Льюїс.
2. За впливу алогенних МСК процес метастазування переходить у васкулярну стадію швидше, що засвідчує вищий показник кількості метастазів більшого розміру - 52,5 проти 31,4 % у тварин контрольної групи.
3. Показник загального обєму метастазів за впливу алогенних МСК достовірно вищий (41,52 7,9*), ніж у тварин контрольної групи (17,94 6,59) (р<0,05).
4. Застосування МСК у мишей з трансплантованої карциномою легень Льюіс чинить вплив на збільшення показника загального обєму метастазів (?2х= 0,26, р<0,05)
Список литературы
1. Балицкий К. П. Метастазирование опухолей: патогенетические аспекты. Киев: АН УССР, К. П.Балицкий , А. Л.Воронцова, И. А. Лисняк. - Наук. Думка - 1991.- 244 с
2. Prockop D. J. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues / D. J. Prockop // Science. - 1997. - Vol. 276:71-74.
3. Spaeth E. Inflammation and tumor microenvironments: defining the migratory itinerary of mesenchymal stem cells. / E. Spaeth, A. Klopp, J. Dembinski, M. Andreeff, F. Marini// Gene Ther. - 2008, 15:730-738
4. Sun Z., The roles of mesenchymal stem cells in tumor inflammatory microenvironment / Z. Sun, S.Wang, R.Zhao //J.Hematol Oncol. - 2014. Feb 6;7(1):14. doi: 10.1186/1756-8722-7-14
5. Klopp A. H. Tumor irradiation increases the recruitment of circulating mesenchymal stem cells into the tumor microenvironment / A. H. Klopp // Cancer Res. - 2007;67:11687-95
6. Qiao L. Suppression of tumorogenesis by human mesenchymal stem cells in a hepatoma model./ L. Qiao, Z. Xu, T. Zhao, Z. Zhao, M. Shi, R. Zhao, L.Ye, X. Zhang // Cell Res. - 2008, 18:500-507р.
7. Karnoub A. E. Mesenchymal stem cells within tumour stroma promote breast cancer metastasis / A. E. Karnoub, A. B. Dash, A. P. Vo, A. D. Sullivan, M. W. Brooks, G. W. Bell, A. L. Richardson, K. Polyak, R. Tubo, R. A. Weinberg // Nature. - 2007, 449:557-563.
8. Spaeth E. L. Mesenchymal stem cell transition to tumor-associated fibroblasts contributes to fibrovascular network expansion and tumor progression / E L. Spaeth, J. L. Dembinski, A. K. Sasser, K. Watson, A. H. Klopp // PLOS One. - 2009, 4:e4992.
9. Cherkashyna D. V. Guerin carcinoma growth inhibition in rats after administration mesenchymal stromal cells of human adipose tissue and bio- regulators of stem and progenitor cells / D. V. Cherkashyna, A. S. Lebedinskii, J. A. Buchanan, N. I. Shtemenko, A. U. Petrenko // J. A.Med.Sc. of Ukraine.- 2010;16(3):492-506.
10. Khakoo A. Y. Human mesenchymal stem cells exert potent antitumorigenic effects in a model of Kaposis sarcoma / A. Y.Khakoo // J Exp Med.-. 2006;203:1235-47.
11. Bronckaers A. Mesenchymal stem/stromal cells as a pharmacological and therapeutic approach to accelerate angiogenesis / A. Bronckaers, P. Hilkens, W. Martens, T. Struys, I. Lambrichts // Pharmacology and Therapeutics.- August 2014, Volume 143, Issue 2, Pages 181-196
12. Keramidas R. The dual effect of mscs on tumour growth and tumour angiogenesis / R. Keramidas // Stem Cell Research & Therapy.- 2013, 4:41
13. Wu Y. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis / Y. Wu, L. Chen, P. Scott, E. Tredget // Stem Cells.- 2007, 25:2648-2659.
14. Khaldi A. Postnatal bone marrow stromal cells elicit a potent VEGF- dependent neoangiogenic response in vivo / A. Khaldi, N. Eliopoulos, D. Martineau, L. Lejeune, K. Lachapelle // Gene Ther.- 2003, 10:621-629.
15. Suzuki K. Mesenchymal stromal cells promote tumor growth through the enhancement of neovascularization // K. Suzuki, R. Sun, M. Origuchi, M. Kanehira, T. Takahata, J. Itoh, A. Umezawa, H. Kijima, S. Fukuda, Y. Saijo // Mol Med.- 2011, 17:579-587.
16. Otsu K. Concentration-dependent inhibition of angiogenesis by mesenchymal stem cells / K. Otsu, S. Das, S. Houser, S. Quadri, S. Bhattacharya, J. Bhattacharya // Blood.- 2009, 113:4197-4205.
17. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. - Washington, D.C., National Academy of Press.- 1996. - 140 p
18. Mazurkevich A.Y., Features conditions selection and cultivation mouse bone marrow adhesive fraction mononuclear cells / A. Y.Mazurkevich, L. V. Kladnytska, V.
V. Kovpak // Bulletin of Taras Shevchenko National University of Kyiv.- Vestnik.- 2013, Vol. 64 Issue 2, p. 41-43
Размещено на .ru
Вы можете ЗАГРУЗИТЬ и ПОВЫСИТЬ уникальность своей работы
