Определение и анализ преимуществ применения вакцинных препаратов и антибиотиков, способных профилактировать и снижать уровень заболеваемости от разнообразных патологий. Исследование показателей крови у телят после применения пробиотических бактерий.
При низкой оригинальности работы "Влияние ассоциаций пробиотических бактерий на гематологические и биохимические показатели крови у телят", Вы можете повысить уникальность этой работы до 80-100%
При использовании их в сверхдопустимых количествах наблюдаются расстройства нормальной функции желудочно-кишечного тракта у животных, что сказывается на дальнейшем их росте и развитии [1, 9]. Поэтому вопрос внедрения новых препаратов, являющихся экологически безопасными, не способными накапливаться в продукции, получаемой от животных, а также не вызывающих расстройств и аллергий у самих животных продолжает оставаться актуальным в современном животноводстве. Опыты на различных видах животных и птице указывают на динамическое изменение прироста живой массы животных опытных групп в корма или в чистом виде, которым были добавлены пробиотические бактерии [3, 11, 14]. Совместное использование ассоциаций пробиотических бактерий, находящихся в выгодном друг для друге симбиозе, усиливает основные антибактериальные свойства пробиотиков, что делает их намного эффективнее, чем препараты в которых содержатся единичные штаммы пробиотических бактерий [10]. Телятам первой группы вводили перорально ежедневно, ассоциации пробиотических бактерий на основе штаммов Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecalis H22 в дозе 5см3, животным второй группы - аналогично ассоциации пробиотических бактерий на основе штаммов Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecium УДС 86 в дозе 5см3, животные третьей группы пробиотиков не получали и служили контролем.Анализ исследования цельной крови телят не выявил существенных изменений основных гематологических и биохимических показателей крови у телят после применения ассоциаций пробиотических бактерий: Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecalis H22; Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecium УДС 86. Нормализация основных показателей крови свидетельствует об отсутствии нарушений со стороны системы крови под действием ассоциаций пробиотических бактерий и общем улучшении процессов обмена веществ в организме телят.
Введение
Современное развитие сельского хозяйства и в частности вопросы выращивания здорового молодняка животных требуют решительных действий от животноводческих специалистов для получения продукции высокого качества. Для достижения этих целей на фермах применяют вакцинные препараты и антибиотики, способные на ранних стадиях развития животных профилактировать и снижать уровень заболеваемости от разнообразных патологий. Но не всегда данные препараты приносят положительный эффект.
Антибиотики, применяемые в качестве терапевтических средств и препаратов для стимуляции роста и развития молодняка животных, способны накапливаться в получаемой от животных продукции, что может привести к возникновению аллергий и дисбиозов у людей [5]. При использовании их в сверхдопустимых количествах наблюдаются расстройства нормальной функции желудочно-кишечного тракта у животных, что сказывается на дальнейшем их росте и развитии [1, 9]. Поэтому вопрос внедрения новых препаратов, являющихся экологически безопасными, не способными накапливаться в продукции, получаемой от животных, а также не вызывающих расстройств и аллергий у самих животных продолжает оставаться актуальным в современном животноводстве.
Для решения поставленного вопроса в последнее десятилетие широко начали использоваться пробиотики - препараты содержащие в своем составе живые микроорганизмы или вещества микробного происхождения. Как правило они безвредны, не токсичны и не вызывают аллергий и аутоиммунных расстройств в организме животных [12]. Они не оказывают побочного действия на микрофлору желудочно-кишечного тракта, не загрязняют окружающую среду, помогают усваивать корма [2]. По эффективности действия пробиотики не уступают некоторым антибиотикам и химиотерапевтическим средствам [4, 7]. Пробиотики эффективно используются в качестве препаратов ускоряющих рост и развитие животных. Опыты на различных видах животных и птице указывают на динамическое изменение прироста живой массы животных опытных групп в корма или в чистом виде, которым были добавлены пробиотические бактерии [3, 11, 14]. Ряд авторов отмечает незначительное изменение показателей со стороны систем крови при использовании пробиотиков животным. Их влияние заключается в незначительном увеличении уровня отдельных показателей крови (эритроциты, лейкоциты, гемоглобин), повышением бактерицидной, лизоцимной и комплементарной активности сыворотки крови, активизацией фагоцитарной реакции лейкоцитов крови и общим усилением иммуномодулирующей функции. [6, 15, 18]. В настоящее время на рынке пробиотиков востребованы комбинированные пробиотические препараты. Они избирательно стимулируют рост и биологическую активность микроорганизмов нормальной кишечной микрофлоры, положительно влияют на состав микробиоценоза кишечника [8]. Совместное использование ассоциаций пробиотических бактерий, находящихся в выгодном друг для друге симбиозе, усиливает основные антибактериальные свойства пробиотиков, что делает их намного эффективнее, чем препараты в которых содержатся единичные штаммы пробиотических бактерий [10]. Наиболее частыми бактериями, входящими в состав ассоциированных пробиотиков являются молочнокислые бактерии родов Lactobacillus и Bifidobacterium [13]. В последнее время возросло количество штаммов микроорганизмов различных родов: Escherichia, Streptococcus, Enterococcus, Bacteroides, Bacillus, Propionibacterium, применяемых в качестве ассоциаций для производства пробиотиков [16, 17]. В отличие от лактобацилл и бифидобактерий, для создания пробиотических препаратов энтерококки используют сравнительно недавно, в связи, с чем количество пробиотиков, содержащих данные микроорганизмы на рынке, минимально.
Целью нашей работы являлось изучение влияния ассоциации пробиотических бактерий Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecalis H22; Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecium УДС 86 на гематологические и биохимические показатели крови телят, а также подтверждение их безопасности на организм животных.
Материалы и методы
Использовались депонированные паспортизированные штаммы Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521, Enterococcus faecium УДС 86 и Enterococcus faecalis H22 в совместной ассоциации. Культивирование бифидобактерий проводили в аэробных условиях при температуре 37o C в течении 24-48 часов на среде Бифидум-среда (г. Оболенск, Россия). Энтерококки культивировали в аэробных условиях при температуре 37o C в течении 24 часов на среде М17 (ООО «НПЦ «БИОКОМПАС-С», Россия).
Объектом исследований служили новорожденные телята двух дневного возраста (n=30). Материалом для гематологических исследований (количество эритроцитов, количество лейкоцитов, концентрация гемоглобина и гематокрита) являлась кровь, а для биохимических исследований ее сыворотка. Кровь у телят для исследования гематологических и биохимических показателей брали в объеме 5,0-10,0 мл. Исследования и апробация полученных результатов были проведены в условиях СПХ «Правокумское», Советского района Ставропольского края на телятах черно-пестрой породы.
Было сформировано три группы животных: две опытных и одна контрольная по 10 голов в каждой. Телятам первой группы вводили перорально ежедневно, ассоциации пробиотических бактерий на основе штаммов Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecalis H22 в дозе 5см3, животным второй группы - аналогично ассоциации пробиотических бактерий на основе штаммов Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecium УДС 86 в дозе 5см3, животные третьей группы пробиотиков не получали и служили контролем. Отбор и исследования крови у телят для гематологических (количество эритроцитов и лейкоцитов, концентрация гемоглобина и гематокрита) и биохимических исследований проводили на 1-ые и 10-ые сутки эксперимента (после его завершения).
Результаты гематологического исследования крови телят представлены в таблице 1. Анализ исследования цельной крови телят включал определение таких показателей, как число эритроцитов, лейкоцитов, концентрации гемоглобина и гематокрита (таблица 1).
Таблица 1 - Гематологические показатели крови у телят после применения ассоциированных штаммов пробиотических бактерий
* p<0,05 - отличия между опытными группами достоверны по отношению к контрольной
Из данных таблицы 1, видно, что количество эритроцитов на 10-е сутки эксперимента у телят первой и второй групп составило 7,63, 7,76?1012/л, что соответственно на 6,4 и 7,9 % больше, чем у контрольной группы (7,14?1012/л).
Количество лейкоцитов на 10-е сутки эксперимента у телят первой и второй групп составило 9,36, 9,49?109/л, что соответственно на 11,9 и 13,1 % больше, чем у контрольной группы (8,24?109/л).
Уровень гемоглобина на 10-е сутки эксперимента у телят первой и второй групп составил 97, 96,7 г/л, что соответственно на 2,1 и 1,8 % больше, чем у контрольной группы (94,9 г/л).
Уровень гематокрита на 10-е сутки эксперимента у телят первой и второй групп составил 29,48, 30,27%, что соответственно на 6,7 и 9,2 % больше, чем у контрольной группы (27,48%).
Результаты биохимического исследования сыворотки крови телят представлены в таблице 2.
Таблица 2 - Биохимические показатели крови у телят после применения ассоциированных штаммов пробиотических бактерий
* p<0,05 - отличия между группами достоверны по отношению к контролю
Из данных таблицы 2 видно, что, несмотря на снижение показателей общего белка, альбумина, АЛТ и АСТ данные показатели находятся в пределах физиологических норм и приближены к средним значениям нормы к концу эксперимента. Применение телятам 1, 2 групп ассоциаций пробиотических бактерий в течение 10 дней сказалось на обмене веществ и проявлялось достоверным (p<0,05) изменением показателей количества альбуминов, мочевины, креатина, глюкозы и билирубина в пределах физиологической нормы.
В ходе исследования в СПХ «Правокумское», Советского района Ставропольского края у телят черно-пестрой породы опытных групп, принимавших ассоциации пробиотических бактерий, не регистрировалась желудочно-кишечная патология. В то время как у 3-х телят контрольной группы были отмечены признаки расстройства желудочно-кишечного тракта, проявляющейся диареей, лихорадкой и обезвоживанием. Сущность профилактики заключается в том, что телята со второго дня жизни, индивидуально ежедневно с интервалом в 24 часа, орально выпаиваются пробиотики содержащие ассоциации пробиотических бактерий на основе изучаемых штаммов Полученные данные об отсутствие расстройств желудочно-кишечного тракта телят опытных групп, могут служить основанием о профилактической способности данных ассоциаций пробиотических бактерий. теленок антибиотик патология
Вывод
Анализ исследования цельной крови телят не выявил существенных изменений основных гематологических и биохимических показателей крови у телят после применения ассоциаций пробиотических бактерий: Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecalis H22; Bifidobacterium bifidum DSM 20456, ATCC 29521 и Enterococcus faecium УДС 86. Нормализация основных показателей крови свидетельствует об отсутствии нарушений со стороны системы крови под действием ассоциаций пробиотических бактерий и общем улучшении процессов обмена веществ в организме телят. Незначительные увеличения показателей крови у телят опытных групп (количество эритроцитов, уровня гемоглобина и гематокрита) может свидетельствовать о несущественном влиянии ассоциаций пробиотических бактерий на эти показатели. В ходе проведенных биохимических исследований было установлено, что в сыворотках крови телят все изучаемые параметры находились в пределах физиологической нормы и не подверглись существенным изменениям. Основные показатели крови находятся в пределах нормы, что свидетельствует о нормальном физиологическом состоянии животных при применении им ассоциаций пробиотических бактерий.
Результаты исследования дают основание судить о безопасности данных штаммов и их безвредности для организма телят.
Список литературы
1. Гласкович М.А. Влияние кормовых антибиотиков на кишечный микробиоценоз сельскохозяйственных животных: краткий аналитический обзор / М.А. Гласкович, Е.А., Капитонова Е.А. // Ученые записки учреждения образования "Витебская ордена "Знак почета" государственная академия ветеринарной медицины". - 2010. - Т. 46. - № 1-1.- С. 194-197.
2. Гужвинская С.А. Поиск перспективных штаммов бифидобактерий и лактобактерий для разработки биопрепаратов / С.А. Гужвинская // «Ветеринария сегодня». - 2013. - № 4. - С. 40-44.
3. Дубская Е.И. Эффективность использования пробиотиков при выращивании уток на мясо / Е.И. Дубская // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2007. - Т. 1. - № 13-1. - С. 145-147.
4. Ивановский А.А. Новый пробиотик для борьбы с диареиным синдромом у телят / А.А. Ивановский, О.Н. Лагунова, В.В. Зимирева, О.В. Белорыбкина // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. - 2005. -№ 7.- С. 131-133.
5. Илиеш В.Д. Пробиотики - путь к качеству и безопасности продуктов питания / В.Д. Илиеш, М.М. Горячева // Свиноводство. - 2012. - № 6. - С. 25-27.
6. Маннапова Р.Т. Молочная сыворотка и пробиотик для коррекции биологических и повышения продуктивных показателей животных / Р.Т. Маннапова, И.М. Файзуллин // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2010. - Т. 202. - С. 127-130.
7. Оптимизация микробиоценозов среды обитания животных путем направленного изменения микробных экосистем с использованием пробиотиков: Рекомендации/ Г.А. Ноздрин, А.Б. Иванова, А.Г. Ноздрин. - Новосибирск, 2003. - 52с.
10. Chapman C. M. C. Health benefits of probiotics: are mixtures more effective than single strains? / C. M. C. Chapman, G. R. Gibson, I. Rowland // European Journal of Nutrition. - 2011. - Vol. 50. - №. 1. P. 1-17.
11. Chaucheyras-Durand F. Probiotics in animal nutrition and health / F. Chaucheyras-Durand, H. Durand // Benef Microbes. - 2010. -Vol. 1. - P. 3-9.
12. Kaur I.P. Probiotics: potential pharmaceutical applications / I.P. Kaur, K. Chopra, A. Saini // Eur J Pharm Sci. - 2002. - Vol. 15. - № 1. - P. 1-9.
13. Ljungh A. Lactic acid bacteria as probiotics / A. Ljungh, T. Wadstrom // Curr Issues Intest Microbiol. - 2006. - Vol. 7- №2. - P. 73-89.
14. Ozheredova N. A. The influence of a complex of probiotic cultures on intensity of development the animals / N. A. Ozheredova, E. V. Svetlakova, M. N. Verevkina, A.N. Simonov, N. V. Vasiliev // Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2016. - Vol. 7. № 2. - P. 1638-1642.
15. Qadis A.Q. Immune-stimulatory effects of a bacteria-based probiotic on peripheral leukocyte subpopulations and cytokine MRNA expression levels in scouring holstein calves. / A.Q. Qadis, S. Goya, M. Yatsu, A. Kimura, T. Ichijo, S. Sato // J Vet Med Sci. - 2014. - Vol. 76. -№ 5. - P. 677-684.
16. Rolfe R.D. The role of probiotic cultures in the control of gastrointestinal health / R.D. Rolfe // J Nutr. - 2000. - Vol.130. - P. 396-402.
17. Senok A.C. Probiotics: facts and myths / A.C. Senok, A.Y. Ismaeel, G.A. Botta // Clin Microbiol Infect. - 2005. - Vol. 11. - № 12. - P. 958-966
18. Yasui H. Immunomodulatory function of lactic acid bacteria / H. Yasui, K. Shida, T. Matsuzaki, T. Yokokura // Antonie Van Leeuwenhoek. - 1999. Vol. 76. - P. 383-389.
Размещено на .ru
Вы можете ЗАГРУЗИТЬ и ПОВЫСИТЬ уникальность своей работы
