Лучистая энергия как стимулятор развития птицы в птицеводстве. Результаты исследования обработки инкубационных яиц перед закладкой для инкубации, эмбрионов светом ламп БУВ- 15; БУВ-30; ОБН-150, ДРТ-400. Влияние на показатели эмбрионального развития.
При низкой оригинальности работы "Показатели развития цыплят-бройлеров в эмбриональный период при ультрафиолетовых воздействиях", Вы можете повысить уникальность этой работы до 80-100%
Показатели развития цыплят-бройлеров в эмбриональный период при ультрафиолетовых воздействияхОдним из направлений повышения продуктивных качеств птицы, является применения наряду с полноценным кормлением всевозможных стимуляторов развития птицы, в числе которых можно успешно применять лучистую энергию [7;12;13;14;15;17;18;27]. Тогда многие ученые, в том числе Риттер, установили, что свет состоит из трех отдельных компонентов: окислительного или теплового (инфракрасного) компонента, осветительного компонента (видимого света), и восстановительного (ультрафиолетового) компонента. Научно-практические исследования ряда авторов посвященных исследованиям влияния ультрафиолетовых лучей на развитие птицы показали, что обработка эмбрионов, а так же молодняка птицы ультрафиолетовыми лучами, вызывает сложные физиологические, биохимические и биофизические сдвиги, указывающие на стимулирующий эффект. Экспериментальная установка представляет собой металлический каркас (1), на котором укреплены бактерицидные лампы БУВ-30 (2), бактерицидная лампа ОБН-150 (6), ртутно-кварцевая лампа ДРТ-400 (7), блок питания лампы ДРТ-400 (8), ультрафиолетовые лампы БУВ-15 (9), редуктор (11) электродвигатель редуктора (10), приспособление для установки лотков с яйцами (12), транспортирующий механизм (14), пульт управления (15), пускатель КМЗ-2 (4), высоковольтный трансформатор (5),. Для опытов формировались пять групп яиц - аналогов: одного возраста, одной массы, одного количества, по 144 эмбриона, из которых 1 группа пропускалась через конвейер установки для облучения птицы при выключенных источниках лучистой энергии и служила контролем, 2 группу двумя лампами БУВ-15 (?=254/400 нм, средней дозой на поверхности яиц 15 Вт), 3 группу - со всех сторон тремя бактерицидными лампами БУВ-30 (л=254/400 нм, средней дозой на поверхности яиц 30 Вт), 4 группу лампой ОБН-150 (?=254 нм средней дозой 30 Вт), 5 группу - ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400 (?=400-185 нм, средней дозой на поверхности яиц 20 мэр.) в экспозициях по 3 минуты.При облучении инкубационных яиц и развивающихся эмбрионов в группах применения ультрафиолета ламп БУВ-30 и ОБН-150 не было различий, показатели группы применения лампы БУВ-15 превышали показатели других групп на 1,1 эмбриона. Различие показателей количества кровяных колец между контрольной и опытными группами были более существенны и составили между контрольным и 2 группой 1,1 яиц, 3-1,5яиц, 4-1,4 яиц, и 5 группой-2,0 яиц, (Р<0,01). Группа Овоскопия Вывод инкубационный отход кондиционных цыплят всего, шт. в том числе голов % от заложен яиц % от оплодотвор. яиц неоплод. яиц, шт. кровяных кол., шт. замерш.эмбрион, шт. задох, шт. некондиц. цыпл. гол. Эмбрионального отхода по категории задохликов по сравнению с 1 группой было достоверно ниже в 4 и 5 опытных группах и составил-1,1 эмбриона (Р0,05) между 1 и 3 группами - 0,4 эмбриона (Р>0,05). В итоге инкубационный отход (неоплодотворенных яиц, кровяных колец, замерших эмбрионов, задохликов и некондиционных, слабых цыплят и калек) в контрольной группе составил 26,09 единиц, что больше, чем в группе применения лампы БУВ-15 - на 3,5 единиц (Р>0,05), лампы БУВ-30 - на 4,9 (Р<0,05), лампы ОБН-150 - на 6,0 единиц (Р<0,01) и лампы ДРТ-400 - на 7,5 единиц (Р<0,01).Облучение инкубационных яиц перед закладкой для инкубации развивающихся эмбрионов с интервалом 6 дней бактерицидными лампами БУВ-15, БУВ-30, ОБН-150 и ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 стимулирует эмбриональное развитие птицы. На показатели инкубации яиц более существенно повлияли применение ламп БУВ-30, ОБН-150 и лампы ДРТ-400 при превосходстве последнего.
Введение
птица свет лучистый эмбрион
Современное птицеводство представляет собой систему технологических процессов производства продукции. На сегодняшний день диспаритет цен на корма и продукцию снижает продуктивность птицы, рентабельность отрасли ,которые ведут к повышению затрат на единицу продукции. В этой связи поиски технологий, обеспечивающие продуктивность птицы в разрезе генетически заложенных возможностей, является весьма актуальной [2;3;28].
Одним из направлений повышения продуктивных качеств птицы, является применения наряду с полноценным кормлением всевозможных стимуляторов развития птицы, в числе которых можно успешно применять лучистую энергию [7;12;13;14;15;17;18;27].
Одним из биологических объектов, где воздействие лучистой энергии может вызывать значительный биостимулирующий эффект, является инкубационное яйцо [16;17].
В историческом плане наиболее изученным является биологическое действие света ультрафиолетового диапазона [1;4;5;6;8;9;10;11;15;21;22;23].
Понятие об ультрафиолетовых лучах впервые встречаются у индийского философа 13-го века Shri Madhvacharya в его труде Anuvyakhyana. Атмосфера описанной им местности Bhootakasha содержала фиолетовые лучи, которые невозможно увидеть невооруженным глазом.
Учитывая вышесказанное и обнаружение инфракрасного света, немецкий физик Иоган Вильгельм Риттер начал поиски света с длиной волны короче фиолетового света. В 1801 году он установил, что хлорид серебра, который разлагается под действием света, более активно разлагается под действием невидимого излучения за пределами фиолетовой области спектра. Разные участки спектра неодинаково влияют на скорость потемнения. Тогда многие ученые, в том числе Риттер, установили, что свет состоит из трех отдельных компонентов: окислительного или теплового (инфракрасного) компонента, осветительного компонента (видимого света), и восстановительного (ультрафиолетового) компонента. В дальнейшем идеи о единстве трех различных частей спектра были впервые описаны в трудах Александра Беккереля, Македонио Меллони и др. (1842)
Многими авторами установлено, что биологическое действие света ультрафиолетового диапазона, которого успешно можно использовать как для снижения бактериальной загрязненности воздуха, и технологического оборудования, так и в биостимулирующих целях в области биологии и медицины [1;4;7;9;27;]
Научно-практические исследования ряда авторов посвященных исследованиям влияния ультрафиолетовых лучей на развитие птицы показали, что обработка эмбрионов, а так же молодняка птицы ультрафиолетовыми лучами, вызывает сложные физиологические, биохимические и биофизические сдвиги, указывающие на стимулирующий эффект. При этом повышается выводимость яиц, снижается отход инкубации. Полученный молодняк характеризуется лучшими экстерьерными и интерьерными показателями, более высоким уровнем естественной характерности и хорошими продуктами качества при обработке яиц ультрафиолетовыми лучами оптимальная экспозиция от 1 до 15 минут, однако по данному вопросу, а так же подбору искусственных источников ультрафиолетового света еще нет единого мнения.
Отечественной промышленностью выпускаются достаточно большое количество искусственных источников света ультрафиолетового диапазона, которые делятся на следующие виды (табл. 1) Изучение биологического действия, которых весьма актуально, особенно в сравнительном плане
Виды ультрафиолетового света. Таблица 1.
Наименование Аббревиатура Длина волны в Количество нанометрах энергии на фотон
Работа выполнена на кафедре инфекционных и инвазионных болезней ФГБОУ ВПО «Горский государственный университет», экспериментальная часть работы выполнена в условиях птицефабрики «Ардонская», где разводят птицу отечественного двухлинейного кросса «Конкурент-2».
Ультрафиолетовую обработку эмбрионов проводили в светолазерной установке (Мамукаев М.Н. и соавт. Патент на изобретение №2267265 от 10 января 2006г. с введением в конструкцию источников ультрафиолетового света ОБН-150 (рис.1).
Экспериментальная установка представляет собой металлический каркас (1), на котором укреплены бактерицидные лампы БУВ-30 (2), бактерицидная лампа ОБН-150 (6), ртутно-кварцевая лампа ДРТ-400 (7), блок питания лампы ДРТ-400 (8), ультрафиолетовые лампы БУВ-15 (9), редуктор (11) электродвигатель редуктора (10), приспособление для установки лотков с яйцами (12), транспортирующий механизм (14), пульт управления (15), пускатель КМЗ-2 (4), высоковольтный трансформатор (5),. С помощью пульта управления подается напряжение в пульт управления (15). Тумблером ТВ-1 включается бактерицидные лампы БУВ-30 (2) и ТВ-2 - ртутно-кварцевая лампа ДРТ-400 (7), ТВ-3 - бактерицидные лампы БУВ-15 (9), ТВ-4 - бактерицидная лампа ОБН-150 (6). По истечению 5 мин. установка готова к эксплуатации
Работа установки: лотки с инкубационными яйцами (13), и суточными цыплятами подаются на цепной транспортер (12) и передвигаются по камере подсветки (17), облучаются светом бактерицидных ламп БУВ-30 (2) и ОБН-150 (6) двумя лампами БУВ-15 (9) и ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400 (7), затем транспортирующим механизмом (14) , скорость которого регулируется посредством кнопок магнитного пускателя КМЗ-2 (4), выдвигаются на подставки для лотков (12) с противоположной стороны от пульта управления и используется в дальнейшем технологическом процессе.
Обработку эмбрионов проводили перед инкубацией, на 6 12, 18 дни инкубации.
Выбор режима обработки птицы основан на исследованиях, проведенных ранее.
Для опытов формировались пять групп яиц - аналогов: одного возраста, одной массы, одного количества, по 144 эмбриона, из которых 1 группа пропускалась через конвейер установки для облучения птицы при выключенных источниках лучистой энергии и служила контролем, 2 группу двумя лампами БУВ-15 (?=254/400 нм, средней дозой на поверхности яиц 15 Вт), 3 группу - со всех сторон тремя бактерицидными лампами БУВ-30 (л=254/400 нм, средней дозой на поверхности яиц 30 Вт), 4 группу лампой ОБН-150 (?=254 нм средней дозой 30 Вт), 5 группу - ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400 (?=400-185 нм, средней дозой на поверхности яиц 20 мэр.) в экспозициях по 3 минуты.
Перед постановкой опытов, взвешивались лотки без инкубационных яиц, затем подбирались группы яиц - аналоги по массе, возрасту эмбрионов, качественным показателям, которых перед инкубацией взвешивались и обрабатывались по предложенной схеме. Исследования проводились в трех проворностях. Исследования морфологических показателей эмбрионов и суточных цыплят были организованы в соответствии рекомендациями кафедры птицеводства и болезней птиц МГАВМ и Б.(Бессарабов Б.Ф., 1985).
Режим инкубации соответствовал требованиям ГОСТ а ОНТП - 4974.
Полученный цифровой материал подвергнут статистической обработке по Стьюденту (Е.К. Меркурьева, 1990) методом анализа с применением программы «Statistica - 6» фирмы Microsoft.
В таблицах обозначены результаты математической обработки: - без литера обозначения - -Р>0,05
- с литером обозначения - «*» Р<0,05
- с литером обозначения - «**» Р<0,01
- с литером обозначения - «***» Р<0,001
Вывод
Обработка инкубационных яиц перед закладкой инкубаций, на 6, 12 и 18 дни развития искусственным светом бактерицидных ламп БУВ-15, БУВ-30 и ОБН-150 и ртутно-кварцевый лампы ДРТ-400 оказывает существенное влияние на эмбриональную жизнеспособность птицы в натальный период онтогенеза.(табл. 3). Овоскопия эмбрионов показала, что в количественном отношении по показателю неоплодотворенных яиц в подопытных группах существенных изменений не было. При облучении инкубационных яиц и развивающихся эмбрионов в группах применения ультрафиолета ламп БУВ-30 и ОБН-150 не было различий, показатели группы применения лампы БУВ-15 превышали показатели других групп на 1,1 эмбриона. Более низкий инкубационный отход по категории неоплодотворенных яиц установлен при обработке эмбрионов ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400. По сравнению с контролем показатель был ниже на 2,2 яиц (Р<0,05).
Различие показателей количества кровяных колец между контрольной и опытными группами были более существенны и составили между контрольным и 2 группой 1,1 яиц, 3-1,5яиц, 4-1,4 яиц, и 5 группой -2,0 яиц, (Р<0,01).
Таблица 3. Эмбриональная жизнеспособность мясных цыплят при ультрафиолетовом облучении, n=144
Группа Овоскопия Вывод инкубационный отход кондиционных цыплят всего, шт. в том числе голов % от заложен яиц % от оплодотвор. яиц неоплод. яиц, шт. кровяных кол., шт. замерш.эмбрион, шт. задох, шт. некондиц. цыпл. гол.
Замерших эмбрионов в опытных группах было практически одинаковое количество (4,2-4,8), что ниже показателя контроля в пределах 0,8-1,4 инкубационных яиц.
Эмбрионального отхода по категории задохликов по сравнению с 1 группой было достоверно ниже в 4 и 5 опытных группах и составил- 1,1 эмбриона (Р0,05) между 1 и 3 группами - 0,4 эмбриона (Р>0,05).
При выводе инкубационных яиц в показателях некондиционных, слабых цыплят и колей в подопытных группах не было существенных различий и составили в 1; 4 и 5 группах - 2,5 гол., во 2 и 3 группах 2,8 и 2,6 бройлера соответственно.
В итоге инкубационный отход (неоплодотворенных яиц, кровяных колец, замерших эмбрионов, задохликов и некондиционных, слабых цыплят и калек) в контрольной группе составил 26,09 единиц, что больше, чем в группе применения лампы БУВ-15 - на 3,5 единиц (Р>0,05), лампы БУВ-30 - на 4,9 (Р<0,05), лампы ОБН-150 - на 6,0 единиц (Р<0,01) и лампы ДРТ-400 - на 7,5 единиц (Р<0,01).
Вывод кондиционных цыплят в контрольной группе составили 117,1 бройлера, что ниже показателя 2 группы на 3,6 гол. (Р>0.05), 3-на 4,9 голов (Р<0,05), 4-на 6,0 гол. (Р<0,01) и 5 группы на 7,5 гол. (Р<0.01).
Исследования показателей эмбриональной жизнеспособности цыплят-бройлеров при облучении светом бактерицидных ламп БУВ-15, БУВ-30, ОБН-150 и ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 перед инкубацией, в процессе инкубирования с интервалом 6 дней дают основание сделать следующие выводы: 1. Обработка инкубационных яиц и развивающихся эмбрионов бактерицидными лампами БУВ-15, БУВ-30, ОБН-50 и ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400 в экспозициях в 3 мин не угнетают, а наоборот, стимулируют развитие птицы в натальный период онтогенеза.
2. На инкубационный отход более эффективно отразилась воздействие лампы ДРТ-400, ОБН-150 и БУВ-30,когда показатель был ниже в 1,39 раз (Р<0.01), в 1,29 раз (Р<0,01) и в 1,22 раза (Р<0,05) соответственно.
Применение бактерицидной лампы ОБН-150 на изучаемые показатели было более эффективным, чем ламп БУВ-15 и БУВ-30.
3. На показатель неоплодотворенных яиц более результативным было воздействие лампы ДРТ-400, кровяных колец - лампы ДРТ-400 , БУВ-30 и ОБН-150, задохликов - лампы ОБН-150 и ДРТ-400.
4. На инкубационный отход по категории задохликов, некондиционных, слабых цыплят и калек ультрафиолетовые воздействия существенно не повлияли.
5. На показатель выводимости кондиционных цыплят воздействие ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 и бактерицидных ламп ОБН-150 и БУВ-30 было более результативными. Применение лампы БУВ-30 и ОБН-150 не выявил существенных различий (0,77%).
6. Для окончательного выявления эффективности ультрафиолетовых воздействий диктуется необходимость исследований приростов живой массы, прежде всего в эмбриональном онтогенезе.
Исследование показателей длины и наличия движений при ультрафиолетовых воздействие на эмбрионы выявили изменения в подопытных группах (табл. 2).
Таблица 2. Рост эмбрионов при ультрафиолетовых воздействиях n=5
Группа Возраст эмбрионов, дней
6 12 18 длина эмбриона, мм. отмечено движение, эмбрион Длина эмбриона, мм. наличие пуха, гол. Длина эмбриона, мм.
У 6-дневных эмбрионов в показателях длины и наличия движений в контрольной и опытных групп существенных различий не отмечено. Длина эмбрионов контрольной группы был ниже опытных групп в пределах от 0,7-1,6мм при превосходстве 4 и 5 опытных групп.
В макроскопическом состоянии зародышей в подопытных группах различий не отмечено. Все обследование зародыши погружены в желток, хорошо заметны носовые островки, зачатки век пальцы конечностей.
Патологических отклонении от нормы у зародышей не установлены.
Аналогичные различия зарегистрированы и в 12-дневном возрасте эмбрионов с той разницей, что показатели длины были более контрастны и по сравнению с контролем были выше на 1,31-9,15% и 2,45-2,76% соответственно. При визуальном обследовании установили хорошее развитие эмбрионов, замыкание аллантоиса завершено во всех зародышах. Наличие пуха вдоль спины и движения отмечены во вех эмбрионах.
Вскрытие, визуальное обоснование и взвешивание эмбрионов и суточных цыплят при лучистых воздействиях выявили сдвиги в динамике прироста живой массы опытных групп (табл. 3).
У эмбрионов 6-дневного возраста различия живой массы контрольных и опытных групп существенно не отличались. Масса эмбрионов относительно инкубационных яиц составила в 1 группе 0,87%, во 2-0,9% в 3- 0,9% в 4-0,94% и в 5 группе-0,94%.
У 12-дневных эмбрионов в 1 группе живая масса к массе яиц составила 14,88% при воздействии на эмбрионов перед инкубацией и на 6 день лампой БУВ-15 - 16,01% (P>0,05), лампой БУВ-30-16,52% (P>0,05), лампой ОБН-150 - 16,55% (P<0,05) и ДРТ-400 - 16,49% (Р<0,05).
В 18-дневном возрасте эмбрионов различия живой массы были более выражены. По сравнению с контролем живая масса эмбрионов 2 опытной группы была больше на 0,59г (P>0,05), 3 - на 0,79г (P>0,05), 4 - на 0,88 (P<0,05) и 5 опытной группы на 1,88г (P<0.01).
Таблица 3. Динамика среднесуточных приростов живой массы эмбрионов при ультрафиолетовых воздействиях, n=5.
Показатели Группы
1-контрольная 2-опытная 3-опытная 4-опытная 5-опытная источник ультрафиолетового света.
БУВ-15 БУВ-30 ОБН-150 ДРТ-400
Масса эмбрионов 58,58±0,14 58,22±0,17 58,44±0,18 58,39±0,21 58,40±0,16
Масса сут. Цыплят 40,08±0,35 41,12±0,38 41,68±0,45* 41,53±0,36* 4,42±0,46
При микроскопическом исследовании установили хорошее развитие эмбрионов, замыкание аллантоиса завершено во всех эмбрионах. Наличие пуха отмечено в 1 и 2 группе у 3 эмбрионов, во второй - у 4. В остальных опытных группах у - 4 эмбрионов, у остальных хорошо выражены волосяные сосочки вдоль спины.
В процессе эмбрионального развития выход массы суточных цыплят относительно массы инкубационных яиц составил в контрольной группе 68,41%, во 2 группе - 70,62% (P>0,05), в 3 - 71,32% (P0,05).
Результаты исследований приростов живой массы цыплят-бройлеров в эмбриональный период при ультрафиолетовых воздействиях позволяют сделать следующие выводы: - облучение инкубационных яиц, эмбрионов на 6, 12 и 18 дни эмбрионального развития ультрафиолетовым светом положительно отражается на прирост живой массы и росте эмбрионов;
- различия приростов живой массы до 6-дневнего возраста эмбрионов в подопытных группах были без существенных различий;
- на показатели приростов живой массы эмбрионов более существенно повлияли воздействием бактерицидных ламп БУВ-30 и ОБН-150 и ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400.
- выведенные суточные цыплята при ультрафиолетовых воздействиях отличались более активной реакцией на внешние раздражители.1. Облучение инкубационных яиц перед закладкой для инкубации развивающихся эмбрионов с интервалом 6 дней бактерицидными лампами БУВ-15, БУВ-30, ОБН-150 и ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 стимулирует эмбриональное развитие птицы.
2. На показатели инкубации яиц более существенно повлияли применение ламп БУВ-30, ОБН-150 и лампы ДРТ-400 при превосходстве последнего.
3. Среднесуточные приросты живой массы эмбрионов были наиболее высокие при воздействии на эмбрионы лампы ДРТ-400. Результаты приростов живой массы эмбрионов, подвергнутых воздействию бактерицидных ламп БУВ-30 и ОБН-150 существенно не отличались.
4. В показателях выхода живой массы суточных цыплят относительно массы инкубационных яиц выявлены существенные различия. Выход массы суточных цыплят относительно массы инкубационных яиц были наиболее высокие при применении лампы БУВ-30, ОБН-150 и ДРТ-400 при превосходстве 1.
5. В микроскопическом состоянии эмбрионов в подопытных группах существенных различий не установлено. Все эмбрионы хорошо развиты.
2. Бессарабов Б.Ф. Задачи науки по увеличению продуктивного периода и резистентности кур - несушек. / Б.Ф. Бессарабов. // Ветеринария, 1979. - №10.- С.62-65.
3. Бессарабов Б.Ф., Митюшникова И.И., Федоровский А.Н. Неспецифическая резистентность сельскохозяйственной птицы./Б.Ф. Бессарабов, И.И. Митюшникова, А.Н. Федоровский.// В кн.: XXI Всемирный ветеринарный конгресс./М., 1979. - С. 3.
4. Бырдина А.С. Рекомендации по применению ультрафиолетового излучения в животноводстве и птицеводстве. /А.С. Бырдина// М.: Колос, 1979. - 31с.
5. Димитров С., Пеев Н., Христова Х. Влияние ультрафиолетовых лучей на бройлеров. / С. Димитров, Н. Пеев, Х. Христова. // Животнов. Дни Науки [Болгария],1975.Т.12.-№4.- С. 82-87.
6. Дыгас А.Т. Влияние УФ - облучения на фосфоркальциевый обмен у сельскохозяйственных животных и птиц. / А.Т Дыгас. // Одесса,1975.- С.29-
7. Кодинец Г.А. Влияние ультразвукового облучения на рост и развитие цыплят. / Г.А. Кодинец. // Птицеводсто.-1957.-№5- С. 26-28.
8. Коновалов В.В., Резник Н.К. Ультрафиолетовые лучи для повышения сохранности индюшат. /В.В. Коновалов, Н.К. Резник. // Ветеринария,1982.-№4.- С. 24-25.
9. Коновалов В.В., Резник Н.К. Ультрафиолетовые лучи для повышения сохранности индюшат. /В.В.Коновалов, Н.К. Резник// Ветеринария,1983.-№1.- С. 20-21.
10. Кочарян Р.Г. Действие ультрафиолетового облучения яиц на постэмбриональное развитие и продуктивность кур. / Р.Г. Кочарян.// В кн.: Нейрогуморальные основы повышения воспроизводительной функции с.-х. животных и механизмы регуляторной деятельности мозга. Ереван,1978.-С.159-163.
11. Куляков Г.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза и товарная характеристика куриных яиц, обработанных импульсным ультрафиолетовым излучением. / Г.В. Куляков //Автореф. дисс. канд. вет. наук. С.- Петербург.вет. инст-т.- СБП.,1983-15 с.
12. Лебедев П.Т., Усович А.Т. Методы исследования кормов, органов и тканей животных. / П.Т. Лебедев, А.Т. Усович. // М.:Россельхозиздат,1976.-289 с.
13. Мамукаев М.Н. Физиологические показатели, выводимости и жизнеспособности цыплят - бройлеров при светолазернойактивации яиц. / М.Н. Мамукаев.//Автореф. дисс. канд. биол. наук. Боровск, 1988. - 18с.
14. Мебуке Е.М., Челидзе Е.Ф., Майсурадзе М.Н. и др. Предварительные данные о влиянии концентрированных солнечных лучей на повышение инкубационных качеств яиц./ Е.М. Мебуке, Е.Ф. Челидзе, М.Н. Майсурадзе и др. // В кн.: Повышение продуктивности птицы в условиях жаркого климата. Ташкент, 1968. - С. 95-98.
15. Мешков Н., Глагольева А. Влияние ультрафиолетового облучение яиц перед инкубацией на экстерьер суточных цыплят. /Н. Мешков, А. Глагольева // В кн.: Производство продуктов жив.на промышл. осн. На Дальнем Востоке. Новосибирск, 1983. - С. 119-122.
16. Митичашвили В.Р. Применение освещения в период инкубации. /В.Р. Митичашвили // Пробл. аграр. науки. Рус.; рез. груз., англ.- 2003. - С. 116-117.
Размещено на .ru
Вы можете ЗАГРУЗИТЬ и ПОВЫСИТЬ уникальность своей работы
