Гипотеза о механизме формирования нейронных систем на ранней стадии эмбриогенеза. Предполагается, что основу составляет осцилляторная активность нейронов, появляющаяся на ранних стадиях дробления зиготы. Опыты выполнены на эмбрионах травяной лягушки.
Задолго до того, как органы чувств и движения начнут выполнять свои функции, спонтанная нейронная активность детектируется во многих отделах мозга: например, ганглиозные клетки сетчатки зародыша крысы спонтанно активны в то время, когда сетчатка еще слишком незрелая для того, чтобы передавать зрительную информацию. Эксперименты показывают, что нарушение спонтанной электрической активности ганглиозных клеток (например, блокатором натриевых каналов тетродотоксином или электрическими воздействиями соответствующих параметров) изменяет настройку топографической проекции сетчатки и разведение синаптических входов от двух глаз. Большая часть ретинальных ганглиозных клеток во время пренатального развития демонстрирует ритмические паттерны разрядов, причем каждая клетка имеет свой ритм. В сетчатке ритмические разряды в виде спонтанных распространяющихся волн впервые появляются в пренатальном периоде и являются решающими для развития нейронных цепей внутри сетчатки и ЛКТ (Petit-Jacques, Bloomfield, 2008). Ретинальные волны оказываются критичными для формирования проекции сетчатки в первичные области центральной зрительной системы и влияют на развитие самой сетчатки (Firth et al., 2005).
Список литературы
нейронный эмбриогенез зигота лягушка
Гойда О. А., Шабан В. В., Медина В. В. Электрофизиологические параметры ионной транспортной системы на ранних стадиях развития рыб и амфибий // Физиологический журнал. 1992. Т. 38. № 6. С. 102-105.
Кузень С. И., Санагурский Д. И., Муращик И. Г., Гойда О. А. Изменения трансмембранного потенциала развивающегося эмбриона вьюна при действии инсулина, торможении транскрипции и трансляции // Биофизика. 1980. Т. 25. № 4. С. 658-663.
Alle’ne C., Cattani A., Ackman J. B., Bonifazi P., Aniksztejn L., Ben-Ari Y., Cossart R. Sequential generation of two distinct synapse-driven network patterns in developing neocortex // J. Neurosci. 2008. № 28 (48). P. 12851-12863.
Bozhkova V. P., Palmback L. R., Khariton V. Yu., Chaylakhyan L. M. Organization of the surface and adhesive properties of cleavage furrows in loach (Misgurnus fossilis) eggs // Exp Cell Res. 1983. V. 149. № 1. P. 129-39.
Dumollard R., Carroll J., Dupont G., Sardet Ch. Calcium wave pacemakers in eggs // Journal of Cell Science. 2002. V. 115. P. 3557.
Firth S. I., Wang C. T., Feller M. B. Retinal waves: mechanisms and function in visual system development // Cell Calcium. 2005. V. 37. № 5. P. 425-32.
Furlan F., Taccola G., Grandolfo M., Guasti L., Arcangeli A., Nistri A., Ballerini L. ERG conductance expression modulates the excitability of ventral horn gabaergic interneurons that control rhythmic oscillations in the developing mouse spinal cord // J. Neurosci., 2007. V. 24. P. 919-928.
Maffei L., Galli-Resta L. Correlation in the discharges of neighboring rat retinal ganglion cells during prenatal life // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. V. 87. P. 2861-2864.
Mehta V., Sernagor E. Early neural activity and dendritic growth in turtle retinal ganglion cells // Eur J Neurosci. 2006. V. 24. № 3. P. 773-86.
Muller H. A. Of mice, frogs and flies: generation of membrane asymmetries in early development // Dev Growth Differ. 2001. V. 43 (4). P. 327-342.
ODONOVAN M. J. The origin of spontaneous activity in developing networks of the vertebrate nervous system // Curr Opin Neurobiol. 1999. Feb. № 9 (1). Р. 94-104.
Petit-Jacques J., Bloomfield S. A. Synaptic Regulation of the light-dependent oscillatory currents in starburst amacrine cells of the mouse Retina // J Neurophysiol. 2008. V. 100. Р. 993-1006.
Sretavan D. W., Shatz C. J., Stryker M. P. Modification of retinal ganglion cell axon morphology by prenatal infusion of tetrodotoxin // Nature. 1988. Dec. V. 1. № 336 (6198). Р. 468-471.
Размещено на .ru
Вы можете ЗАГРУЗИТЬ и ПОВЫСИТЬ уникальность своей работы
