При низкой оригинальности работы "Особенности кинетики замедленной флуоресценции органических красителей в тканях молочной железы мышей линии BYRB", Вы можете повысить уникальность этой работы до 80-100%
Особенности кинетики замедленной флуоресценции органических красителей в тканях молочной железы мышей линии BYRBПо мере увеличения времени продувки камеры азотом и, следовательно, уменьшения концентрации кислорода, участок нарастания сигнала на кривой исчезает, амплитуда сигнала падает и кинетика становится монотонно затухающей (кривые 2 - 4, рис.1). Мы полагаем, что на временном отрезке от 0 до ~10 мкс кривая ЗФ складывается из трех составляющих, имеющих различную природу [2-4]: , (1) где A1, А2 и A3 - неотрицательные константы, NT (t) - концентрация триплет-возбужденных молекул красителя, ND (t) - концентрация синглетного кислорода. Кривая 1 на рис.1 демонстрирует нарастание ЗФ на начальном участке благодаря накоплению синглетного кислорода в процессе столкновений триплет-возбужденных молекул красителя с молекулярным кислородом в основном (триплетном) состоянии. Полученные экспериментальные кривые ЗФ для нормальной и опухолевой ткани при малой и большой концентрации кислорода в камере показаны на рисунке 2 (кривые с номером 1 на вставках Из рисунка видно, что как в здоровой, так и в опухолевой ткани при естественном составе воздуха над образцами и, следовательно, значительной концентрации молекулярного кислорода в клетках, кинетика ЗФ имеет на коротких временах участок нарастания, которого нет при малых концентрациях кислорода.Анализ экспериментальных кривых замедленной флуоресценции и фосфоресценции эритрозина в биотканях in vitro свидетельствует о сложном характере релаксации долгоживущих возбуждений люминофора.
Введение
В работе представлены результаты изучения кинетики замедленной флуоресценции и фосфоресценции органических красителей в опухолевых и нормальных тканях мышей.
На основе анализа эффективности конкурирующих каналов релаксации триплетных состояний зондов выявлены характерные особенности и отличия длительного послесвечения в здоровых и пораженных тканях.
Методы и объекты исследования
Исследованы ткани молочной железы здоровых самок и особей со спонтанными злокачественными опухолями мышей линии BYRB [1].
Кинетика длительной люминесценции регистрировалась с помощью фотоумножителя с управляющим электродом для "запирания" ФЭУ на время вспышки лазера.
Образцы помещали в герметичную термостатируемую камеру. Газовый состав в камере регулировался дозированной продувкой газообразным азотом с чистотой 99.5%.
Результаты и их обсуждение
На рисунке 1 показана характерная кинетика ЗФ эритрозина в опухолевой ткани молочной железы мыши при различной концентрации кислорода в атмосфере над образцом. Наибольшая интенсивность сигнала (кривая 1, рис.1) зарегистрирована при естественном составе воздуха через 2 мкс после "отпирания" ФЭУ. По мере увеличения времени продувки камеры азотом и, следовательно, уменьшения концентрации кислорода, участок нарастания сигнала на кривой исчезает, амплитуда сигнала падает и кинетика становится монотонно затухающей (кривые 2 - 4, рис.1).
Мы полагаем, что на временном отрезке от 0 до ~10 мкс кривая ЗФ складывается из трех составляющих, имеющих различную природу [2-4]: , (1) где A1, А2 и A3 - неотрицательные константы, NT (t) - концентрация триплет-возбужденных молекул красителя, ND (t) - концентрация синглетного кислорода.
Первое слагаемое в этом уравнении определяет составляющую люминесценции, обусловленную синглет-триплетной аннигиляцией (СТА), второе - триплет-триплетной аннигиляцией (ТТА), а третье - термостимулированной ЗФ (ТЗФ).
Кривая 1 на рис.1 демонстрирует нарастание ЗФ на начальном участке благодаря накоплению синглетного кислорода в процессе столкновений триплет-возбужденных молекул красителя с молекулярным кислородом в основном (триплетном) состоянии. С уменьшением содержания кислорода в среде при неизменной концентрации красителя эффект нарастания ЗФ за счет СТА не проявляется на фоне быстро спадающих во времени ТТА и ТЗФ (1). Этот режим затухания ЗФ реализован в кривых 2, 3 и 4 на рисунке 1.
Для определения доли аннигиляционных вкладов в регистрируемый сигнал была исследована кинетика ЗФ красителей в двух крайних случаях: после длительной продувки камеры азотом и при естественном составе воздуха в камере. Полученные экспериментальные кривые ЗФ для нормальной и опухолевой ткани при малой и большой концентрации кислорода в камере показаны на рисунке 2 (кривые с номером 1 на вставках A и B, D и E, рис.2, соответственно).
Из рисунка видно, что как в здоровой, так и в опухолевой ткани при естественном составе воздуха над образцами и, следовательно, значительной концентрации молекулярного кислорода в клетках, кинетика ЗФ имеет на коротких временах участок нарастания, которого нет при малых концентрациях кислорода. При этом в здоровых и патогенных тканях кинетика ЗФ существенно различается.
При анализе этих кривых учитывалось, что функция времени NT (t) в выражении (1) пропорциональна мгновенному значению интенсивности фосфоресценции образца Іфос (t), т. е
, (2) где B1, В2 и B3 - неотрицательные постоянные коэффициенты.
Технически с помощью вычислительных средств подбирались такие значения коэффициентов B2 - B3 и такие параметры пробных функций B1*N? (t), при которых правая часть (2) наилучшим образом аппроксимирует экспериментальную кривую ІЗФ (t) по методу наименьших квадратов.
Для случая малых концентраций кислорода в клетках в качестве пробной функции N? (t) взята затухающая экспонента, отражающая предположение о том, что при малой концентрации кислорода и большой концентрации триплетных возбуждений величина N? (t) только убывает, т.к. практически весь триплетный кислород переведен в синглетное состояние уже к моменту окончания лазерной вспышки. Для больших концентраций кислорода в клетках в качестве N? (t) бралась сумма трех или четырех лоренцевых кривых, обеспечивающих участки нарастания и спада кривой.
Результаты такой аппроксимации при малой и большой концентрациях кислорода для здоровой и опухолевой тканей показаны на рисунке 2 (кружки на вставках A и B, D и E рис.2, соответственно). Коэффициенты B2 и B3 сведены в таблицу 1. Там же приведены относительные вклады (оцененные по площади под соответствующей кривой) в сигнал ЗФ от процессов СТА, ТТА и ТЗФ. Из рисунка видно, что сделанные предположение относительно вида N? (t) позволяют удовлетворительно аппроксимировать экспериментальные кривые ЗФ при обеих концентрациях кислорода в камере как для нормальных, так и для опухолевых тканей.
Таблица 1. Подгоночные коэффициенты в уравнении (2) и относительные интегральные вклады различных типов длительного послесвечения в общий сигнал
Анализ данных таблицы 1 свидетельствует о том, что в атмосфере азота относительный вклад ТТА в ЗФ заметно больше в нормальной ткани. Причиной тому может быть меньшая вязкость цитоплазмы, приводящая к большей подвижности молекул флуорофора и росту вероятности их взаимодействия. Различия в вязкости цитоплазмы в здоровых и опухолевых клетках установлены в работе [5-9]. Полученные нами результаты подтверждают эти выводы и дают косвенный метод оценки вязкости цитоплазмы в клетках.
Заметим, что интенсивность и длительность свечения, обусловленного СТА, в здоровой и опухолевой тканях отличаются, но относительный интегральный вклад этого процесса в кинетику ЗФ в разных тканях при малой концентрации кислорода одинаков. Равенство вкладов можно объяснить тем, что "выгорание" синглетного кислорода в здоровых тканях идет быстрее за счет большей подвижности молекул в менее вязкой цитоплазме. Этот предположение подтверждается кинетикой безразмерных функций B1*ND (t) (вставка С на рис.2), отражающих ход концентрации синглетного кислорода.
Сравнение кривых ЗФ и данных табл.1 при большой и малой концентрациях кислорода в камере показывает, что в целом изменение относительных вкладов трех составляющих ЗФ соответствует ожидаемому возрастанию роли СТА при увеличении концентрации кислорода. Вместе с тем нужно отметить, что это возрастание необычно велико, поскольку оно привело к полному исчезновению вклада в сигнал от триплет-триплетной аннигиляции в образцах.
Обращает на себя внимание существенная разница в ходе безразмерных функций B1*ND (t) при большой концентрации кислорода в камере (вставка F на рис.2). Мгновенные значения B1*ND (t) через коэффициент B1 зависят от условий образования столкновительных пар флуорофор - кислород, т.е. потенциально могут быть индикаторами специфического состояния клеток. С другой стороны, B1*ND (t) через ND (t) увеличивается с ростом концентрации молекулярного кислорода в клетке. Однако представляется маловероятным, что столь значительное отличие кривых B1*ND (t) у нормальной и опухолевой тканей объясняется разными в концентрациями молекулярного кислорода в клетках.
Известно [10-13], что в клетках тканей человека и животных имеют место механизмы, поддерживающие сравнительно "безопасную" концентрацию кислорода и его активных форм (АФК) в цитоплазме. К ним относят защитные меры надклеточного уровня, снижающие снабжение клеток кислородом, а также внутриклеточные процессы - четырехэлектронное восстановление внутриклеточного кислорода при участии цитохромоксидазы без освобождения свободных радикалов; ферментативное удаление образовавшегося супероксидного анион-радикала и перекиси водорода, антоксидантную нейтрализацию АФК и др. Однако в наших экспериментах все эти механизмы либо выключены (нет кровоснабжения), либо недостаточно эффективны по сравнению с мощным диффузионным потоком кислорода прямо из атмосферы через мембрану клетки. В этих условиях концентрация молекулярного кислорода внутри разных клеток должна определяться только его внешним парциальным давлением и растворимостью в цитоплазме.
Таким образом, заметное увеличение B1*N? (t) в пораженных тканях по сравнению с нормальными (вставка F на рис.2) обусловлено не разными исходными концентрациями кислорода в клетках, а более благоприятными условиями для образования синглетного кислорода и процессов СТА. Однако обратное соотношение эффективностей СТА в этих же образцах при пониженных концентрациях кислорода (табл.1 и вставка С на рис.2) не соответствует этому предположению.
С учетом этих противоречивых обстоятельств можно дать следующую интерпретацию полученных результатов. По-видимому, наблюдаемые сигналы ЗФ обусловлены суперпозицией свечения молекул красителя, адсорбированных мембраной, связанных внутри - и межклеточными белками, и молекул, растворенных в воде цитоплазмы. При естественном составе воздуха над образцами кислород, имея высокую концентрацию и большую подвижность, успевает "потушить" триплетные возбуждения молекул красителя в воде еще до "отпирания" ФЭУ и начала регистрации сигналов. При этом в эксперименте фиксируется только ЗФ от красителя, связанного белками и находящегося в мембране, где подвижность кислорода и доступность красителя для него значительно меньше.
С этой точки зрения следует считать, что найденная нами разница в ходе B1*N? (t) и в характеристиках ЗФ в разных тканях при большой концентрации кислорода скорее обусловлены отличиями в свойствах их мембран, внутри - и межклеточных белков. В этих условиях кинетика ЗФ определяется в основном процессами синглет-триплетной аннигиляции и ТЗФ связанных люминофоров. Этот вывод подтверждается отсутствием в наблюдаемом сигнале ЗФ вклада от ТТА, которая у связанных люминофоров и должна быть полностью "выключена". Отметим в этой связи, что изменения мембран и внутриклеточного состава в патологических тканях установлены в ряде работ [14-20].
При малых концентрациях кислорода экспериментально регистрируется ЗФ как связанных белками, так и растворенных в воде цитоплазмы молекул красителя, что приводит к другим значениям B2 и B3 и, возрастанию роли ТТА в процессе. Об участии в формировании общего сигнала диффузионно-подвижных молекул красителя в цитоплазме свидетельствует заметный интегральный вклад ТТА в ЗФ (таблица 1).
Вывод
Анализ экспериментальных кривых замедленной флуоресценции и фосфоресценции эритрозина в биотканях in vitro свидетельствует о сложном характере релаксации долгоживущих возбуждений люминофора. Очевидно, что для окончательных выводов о природе составляющих замедленной флуоресценции люминофоров в тканях необходимы дополнительные исследования. Тем не менее, заметные различия в характере сигналов в нормальных и патогенных тканях, позволяют надеяться на разработку альтернативного метода диагностики биотканей.
Список литературы
1. Moiseeva E.V. Original Approaches to Test Anti-breast Cancer Drugs in a Novel Set of Mouse Models. Proefschrift Universiteit Utrecht, 2005. p. 191.
2. Kenner R.D., Khan A.U. Molecular oxygen enhansed fluorescence of organic molecules in polymer matrices: a singlet oxygen feedback mechanism // J. Chem. Phys. 1976. V.64. № 5. P.1877-1882.
3. Летута С.Н., Маряхина В.С., Пашкевич С.Н., Рахматуллин Р.Р. Длительная люминесценция органических красителей в клетках биологических тканей // Оптика и спектроскопия, 2011, том 110, № 1, с.72-75.
5. Charles Margraves, Kenneth Kihm, Sang Youl Yoon and other, Simultaneous measurements of cytoplasmic viscosity and intracellular vesicle sizes for live human brain cancer cells // Biotechnology and Bioengineering, Vol.108, No.10, October, 2011.
6. Tomasz Kalwarczyk, Natalia Ziebacz, Anna Bielejewska and other, Comparative analysis of viscosity of complex liquids and cytoplasm of mammalian cells at the nanoscale // NANOLETT, 11, 2011 - p.2157-2163.
7. Bicknese S., Periasamy N., Shohet S. B., and Verkman A. S. Cytoplasmic viscosity near the cell plasma membrane: measurement by evanescent field frenquency - domain microfluorimetry // Biophysical Journal, Vol.65, September 1993 - p.1272-1282.
8. Yasuo Hashimoto and Naomi Shinozaki, Measurement of cytoplasmic viscosity by fluorescence polarization in phytohemagglutinin - stimulated and unstimulated human peripheral lymphocytes // The Journal of Histochemistry and Cytochemistry, Vol.36, No.6, p.609-613, 1988.
9. Andrea M. Mastro, Mihael A. Babich, William D. Taylor, and Alec D. Keith, Diffusion of a small molecule in the cytoplasm of mammalian cells // Journal of Cell Biology, Vol.81, June 1984. - p.3414-3418.
10. Atlante A., Calissano P., Bobba A and other, Cytochrome C is released from mitochondria in a reactive oxygen species (ROS) - dependent fashion and can operate as a ROS scavenger and as a respiratory substrate in cerebellar neurons undergoing excitotoxic death // J. Biol. Chem., №24, 2000. - p.275.
11. Julio F. Turrens Mitochondrial formation of reactive oxygen species // Journal of Physiology, Vol.552, № 2, 2003. - p.335-444.
12. Чеснокова Н.П., Понукалина Е.В., Бизенкова М.Н. Источники образования свободных радикалов и их значение в биологических системах в условиях нормы // Современные наукоемкие технологии, № 6, 2006. - с.28-34.
13. Чеснокова Н.П., Понукалина Е.В., Бизенкова М.Н. Общая характеристика источников образования свободных радикалов и антиоксидантных систем // Успехи современного естествознания, № 7, 2006. - с.37-41.
14. Stern R. G., Milestone B. N., Gatenby R. A., Carcinogenesis and the plasma membrane // Medical Hypotheses, Vol.52, № 5, 1999. - p.367-372.
15. Barbara Szachowicz-Petelska, Izabela Dobizynska, Stanislaw Sulkowski and Zbigniew Eigaszewski, Characterization of the cell membrane during cancer transformation // Journal of Environmental Biology, Vol.31, № 5, September 2010. - p.845-850.
16. Голованов М.Г. Биофизическая структура внешнего слоя плазматической мембраны опухолевых клеток (гликокаликса) // Вестник РОНЦ им.Н. Н. Блохина РАМН, т.17, № 1, 2006.
17. Jinyi Wang, Zong Fang Wan, Wenming Lui and other, Atomic force microscope study of tumor cell membranes following treatment with anticancer drugs // Biosensors and Bioelectronics, Vol.25, 2009. - p.721-727.
18. Kiyohide Kojima Molecular aspects of the plasma membrane in tumor cells // J. Med. Sci., Vol.56, 1993. - p.1-18.
19. James K. Selkirk, Elwood J. C., and Morris H. P., Study on the proposed role of phospholipid in tumor cell membrane // Cancer Research, Vol.31, Januery 1971. - p.27-31.
20. Ora A. Weisz Organelle acidification and disease // Backwell Munksgaard, 2003, Vol.4, p.57-64.
Размещено на .ru
Вы можете ЗАГРУЗИТЬ и ПОВЫСИТЬ уникальность своей работы
