Иммунобиохимическое, микробиологическое, морфофункциональное обоснование применения целлюлозосодержащих продуктов зернопереработки после твердофазной бактериальной ферментации при выращивании телят и гусей - Автореферат

бесплатно 0
4.5 392
Установление влияния целлюлозосодержащих кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, на биохимические показатели качества мяса телят. Разработка научно-обоснованной концепции эффективности их включения в состав рациона животных и птиц.


Аннотация к работе
Определить влияние лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на показатели Т-и В-систем иммунитета телят и гусей, со сравнительной оценкой: а) динамики изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в крови телят и гусей, б) динамики изменения содержания Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке, лимфатических узлах и Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят, в) динамики изменения содержания Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке и Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе гусей, г) динамики изменения содержания В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей. Обосновать влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на изменение содержания жирорастворимых и водорастворимых витаминов в крови телят и молоке коров под влиянием целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации. Провести сравнительный анализ влияния лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации на микробно-микологическую экологию кишечника телят и гусей с определением: динамики изменения содержания нормофлоры (бифидобактерий и лактобацилл), условно-патогенных микроорганизмов (стафилококков, клостридий, эшерихий, псевдомонов), микроскопических грибов из родов Mucor, Aspergillus и Penicillium. Выявить влияние твердофазной бактериальной ферментации целлюлозосодержащих кормов ЦЛБ, ПМК, ПКБ на продуктивные показатели гусей родительского стада с учетом: динамики изменения показателей яйценоскости гусей; морфологических и биохимических показателей яиц гусей, характера изменения инкубационных качеств яиц гусей, затрат, переваримости и использования питательных веществ корма. Данные о положительном влиянии целлюлозосодержащих кормов (лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи) на гематологические, иммунологические, морфофункциональные, иммуноморфологические, биохимические, микробиологические, микологические реакции в организме телят и гусей, способствующих повышению продуктивности, снижению затрат корма, улучшению переваримости и использования питательных веществ корма, повышению живой массы, улучшению биохимических и морфологических показателей качества мяса, молока и яиц позволяют рекомендовать применение этих кормов в животноводстве и птицеводстве, как экономически и экологически целесообразное.Его значение увеличилось к 10 дню опыта по 2, 3 и 4-й группам на 1,1; 0,9 и 2,3%, к 30 дню - на 6,5; 8,7 и 8,9%, к 60 дню-на 11,1; 12,9 и 10,2%, к 90 дню - на 13,5; 15,4 и 10,9%. Их максимальный показатель, регистрируемый в 3-ей группе, превысил контрольное значение у телят на 20-ый день опыта по Т-клеткам на 11,7%, по В-клеткам на 8,5%, у гусей на 30-ый день исследований по Т-лимфоцитам на 11,3%, по В-лимфоцитам на 2,7%. Данные по изучению влияния шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на динамику изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в брыжеечном лимфатическом узле телят представлены на рисунке 5. К 10-му дню опыта у гусей 2, 3 и 4-й групп он превысил фоновый уровень на 2,0; 3,5 и 1,3%, к 20-му дню на 4,6; 5,7 и 3,0%, к 30-му дню на 7,3; 8,8 и 6,1%, к 60-му дню на 10,3; 12,5 и 8,0%, к 90-му дню на 14,4; 19,9 и 12,5% и к 120-му дню на 11,3; 18,6 и 12,5%. Анализируя данные, представленные в разделах автореферата 2.2.2 и 2.2.3, можно прийти к заключению, что внесение в рацион откормочных телят и в рацион гусей шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации с использованием молочнокислых Lactobacterium pentoaceticum Вб-23, целлюлолитических Cellulomonas flavigena 22, пропионовокислых Propionibacterium shermanii способствует получению высококачественного кормового продукта, содержащего в своем составе биологически активные вещества, вызывающие повышение в крови, лимфатических узлах, селезенке, тимусе телят, а также в крови, селезенке, сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоцитов, стабилизацию Т-супрессоров, восстановление до уровня физиологических норм в крови IGA, IGG, IGE и ЦИК, приводящих к нормализации иммунного баланса в организме животных и птиц.Твердофазная бактериальная ферментация с использованием бактерий-продуцентов целлюлолитических ферментов (ЦЛБ:ПМБ:ПКБ-2,5:1:1) из неутилизируемых отходов крупяной промышленности (лузги, шелухи) способствует получению кормов с высокими показателями поедаемости, переваримости и питательности, обладающих высокими гемостимулирующими и иммуностимулирующими свойствами, активизирующих биохимические реакции организма, восстанавливающих баланс естественного микробиоценоза кишечника, повышающих показатели продуктивности животных и птиц. Целлюлозосодержащие корма (шелуха проса, гречихи, лузга подсолнечника), после твердофазной бактериальной ферментации, способствуют активизации в организме телят и гусей процессов гемо-, эритро-и лейкопоэза и повышению естественн

Вывод
Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации на гематологические показатели и состояние естественной резистентности телят и гусей

Данные по исследованию динамики изменения содержания гемоглобина и лейкоцитов в крови телят и гусей представлены на рисунке 1.

Рисунок 1. Динамика изменения гемоглобина (а, б; г/л), лейкоцитов (в, г; тыс./мкл) в крови телят (а, в) и гусей (б, г).

Внесение в рацион телят к основному рациону шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало повышению уровня эритроцитов в крови. Данный показатель превышал уровень контроля в крови животных 2, 3 и 4-ой групп к концу опыта на 0,9; 1,2 и 0,7 млн./мкл. Подобным образом изменялась динамика эритроцитов в крови гусей. На 30-й и 60-й дни опыта содержание эритроцитов в крови гусей 2-й группы было выше, чем в контроле, на 0,7 и 1,0 млн./мкл, 3-ей группы на 0,9 и 1,1 млн./мкл, 4-ой группы на 0,8 и 0,9 млн./мкл.

Показатель бактерицидной активности сыворотки крови животных опытных групп по ходу исследований заметно повышался. Его значение увеличилось к 10 дню опыта по 2, 3 и 4-й группам на 1,1; 0,9 и 2,3%, к 30 дню - на 6,5; 8,7 и 8,9%, к 60 дню- на 11,1; 12,9 и 10,2%, к 90 дню - на 13,5; 15,4 и 10,9%. К концу опыта (120 дней) бактерицидная активность сыворотки крови телят опытных групп незначительно снизилась, но продолжала превышать контрольный уровень на 9,2; 11,2 и 5,9%. Подобное влияние оказывали исследуемые корма на бактерицидную активность сыворотки крови гусей. Максимальное повышение бактерицидной активности регистрировалось в сыворотке крови гусей 3-ей группы. К 10, 20, 30 и 60-ым дням опыта она превысила контрольный показатель на 3,0; 5,8; 9,2 и 7,2%. Несколько уступали показателям гусей 3-й группы параметры их у птиц 2 и 4-ой групп.

Данные по исследованию динамики изменения показателей лизоцимной активности сыворотки крови телят и гусей представлены на рисунке 2.

Рисунок 2. Динамика изменения показателя лизоцимной активности сыворотки крови телят (а), гусей (б), %. Здесь и далее обозначения те же, что на рис.1.

Показатель активности комплемента в сыворотке крови телят опытных групп, в процессе исследований, также изменялся в сторону повышения. По 2-ой группе он увеличился, по сравнению с уровнем в контроле, к 10, 20, 30, 60, 90 и 120-м дням опыта на 0,9; 1,6; 2,1; 2,3 1,8 и 1,9 ед. Максимальное повышение активности комплемента регистрировалось в сыворотке крови животных 3-й группы.

Следовательно, целлюлозосодержащие корма, подвергнутые бактериальной биоконверсии ЦЛБ, ПМБ и ПКБ, способствуют активизации процессов гемо-эритро-лейкопоэза и факторов естественной резистентности в организме телят и гусей.

Т- и В-системы иммунитета телят и гусей на фоне внесения в рацион лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

Фоновое значение содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови телят опытных групп соответствовало его уровню в контроле, но в процессе исследований данный показатель последовательно увеличивался. К 10 дню опыта содержание Т-Е-РОК- лимфоцитов в крови телят было выше контрольной цифры по 2, 3 и 4-ой группам на 1,4; 2,1 и 0,8%. Этот процесс прогрессировал по срокам опыта и достиг максимального значения к 60 дню исследований. В последующие сроки исследований уровень Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови телят опытных групп незначительно снижался, но до конца опытов оставался высоким, превышая контроль на 120-ый день опыта на 2,2; 3,7 и 4,3%.

Шелуха проса, гречихи и лузга подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовали активизации в организме животных хелперных и затормаживанию супрессорных реакций (рисунок 3).

Рисунок 3. Динамика изменения содержания Т-хелперов (а), Т-супрессоров (б) в крови телят, %

Внесение в рацион животных указанных кормов способствовало повышению в крови В-ЕАС-лимфоцитов. Показатель В-клеток в крови телят 2, 3 и 4 групп увеличился на 10, 30, 60, 90 и 120-е дни опыта на 2,7; 3,0 и 3,2%; на 4,5; 5,1 и 5,3%; на 3,9; 5,2 и 4,5%; на 4,0; 5,0 и 6,1%); на 3,3; 4,2 и 4,4%.

Результаты исследования изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови гусей, по периодам опыта, представлены в таблице 1.

Таблица 1 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови гусей (М±m/Cv,%; в %)

Группы Сроки исследования в днях от начала опытов

Фон 10 20 30 60

1.Контроль - (ОР) 50,10±1,13 50,20±1,32 50,00±0,97 49,80±0,93 49,90±0,94

5,05 5,86 4,32 4,18 4,20

2.Общий рацион шелуха проса 49,80±1,07 56,70±1,69 59,10±0,78 62,30±1,22 63,00±1,73

4,79 6,65 2,96 4,38 6,15

* *** *** **

3.Общий рацион шелуха гречихи 49,60±1,08 58,90±1,08 61,00±0,71 67,40±0,68 65,30±1,24

4,86 4,09 2,59 2,25 4,25

** *** *** ***

4.Общий рацион лузга подсолнечника 49,70±0,86 54,10±0,93 57,20±1,07 60,40±0,93 57,20±0,97

3,87 3,83 4,17 3,43 3,79

* ** *** **

В крови гусей опытных групп, в процессе исследований, регистрировалось повышение уровня Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоцитов и стабилизация Т-супрессоров (рисунок 4).

Рисунок 4 Динамика изменения содержания Т-хелперов (а; клеток/мм3), Т-супрессоров (б; клеток/мм3) и В-ЕАС-лимфоцитов (в; %) в крови гусей

Внесение в рацион телят целлюлозосодержащих кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности Т-Е-РОК- и В-ЕАС-имфоцитов в селезенке телят и гусей. Их максимальный показатель, регистрируемый в 3-ей группе, превысил контрольное значение у телят на 20-ый день опыта по Т-клеткам на 11,7%, по В-клеткам на 8,5%, у гусей на 30-ый день исследований по Т-лимфоцитам на 11,3%, по В-лимфоцитам на 2,7%. Незначительно уступали показателям телят и гусей 3-й группы показатели животных и птиц 2 и 4-ой групп. До конца опыта активность селезенки телят и гусей опытных групп оставалась на высоком уровне.

Данные по изучению влияния шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на динамику изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в брыжеечном лимфатическом узле телят представлены на рисунке 5.

Результаты исследования динамики изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят приведены в таблице 2.

Рисунок 5 Динамика изменения содержания Т- лимфоцитов (а), Т-хелперов (б), Т-супрессоров (в) и В- лимфоцитов (г) в брыжеечном лимфатическом узле телят, %

Таблица 2 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят (млн./орган)

Группы Стат. показ Сроки исследования в днях от начала опытов

Фон 10 20 30 60

1.Контроль - общий рацион M 469,70 480,20 455,80 486,50 474,30

±m 18,92 2,11 15,61 3,69 6,43

2. Общий рацион шелуха проса M 470,60 515,20 643,40 587,60 590,30

±m 7,22 7,32 12,47 12,82 8,31

Р ** *** *** ***

3. Общий рацион шелуха гречихи M 482,60 540,10 674,20 669,60 644,70

±m 10,94 10,44 8,10 16,02 19,06

Р * *** *** ***

4. Общий рацион лузга подсолнечника M 466,80 497,30 612,00 546,50 519,40

±m 10,50 9,50 15,30 8,65 7,10

Р *** ** **

Внесение в рацион птиц кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности Т-клеток в тимусе гусей. Описываемый показатель увеличился 20-й день опыта в тимусе гусей 2, 3 и 4-й опытных групп на 31,7; 52,6 и 20,5 млн/ орган, на 30-й день на 50,7; 76,2 и 33,6 млн /орган, на 60-й день на 48,7; 70,0 и 27,9 млн/орган.

Содержание В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса птиц опытных групп в процессе исследований имело тенденцию к повышению. К 10-му дню опыта у гусей 2, 3 и 4-й групп он превысил фоновый уровень на 2,0; 3,5 и 1,3%, к 20-му дню на 4,6; 5,7 и 3,0%, к 30-му дню на 7,3; 8,8 и 6,1%, к 60-му дню на 10,3; 12,5 и 8,0%, к 90-му дню на 14,4; 19,9 и 12,5% и к 120-му дню на 11,3; 18,6 и 12,5%. Шелуха проса, гречихи и лузга подсолнечника после бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ способствовали повышению уровня В-клеток в гардеровой железе птиц (таблица 3).

Таблица 3 Динамика изменения содержания В-ЕАС-лимфоцитов в гардеровой железе гусей (М±m/ Cv,%; в %)

Группы Сроки исследования в днях от начала опытов

Фон 10 20 30 60

1. Контроль - ОР 32,70±1,43 31,90±1,28 32,20±1,59 33,30±0,82 32,40±0,37

9,78 8,99 11,05 5,53 2,52

2. ОР шелуха проса 31,60±0,51 37,20±0,58 43,60±1,29 47,10±0,68 46,50±1,52

3,61 3,50 6,61 3,22 7,29

*** *** *** ***

3. ОР шелуха гречихи 32,00±0,63 38,30±1,18 45,30±1,55 48,70±1,36 48,20±1,27

4,42 6,88 7,63 6,23 5,90

** *** *** ***

4. ОР лузга подсолнечника 31,80±0,58 36,00±1,18 42,40±1,29 46,30±1,45 46,00±1,48

4,10 7,35 6,79 6,98 7,21

* *** *** ***

Иммуноглобулины классов G, M и E и циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) в сыворотке крови телят на фоне внесения в рацион целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

Внесение в рацион телят кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности IGG. Уровень антител этого класса в сыворотке крови телят 2, 3 и 4-й групп к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням от начала опыта превысил контрольную цифру на 1,6; 3,5 и 1,1%, на 3,6; 4,9 и 3,9%, на 6,4; 7,0 и 6,1%, на 8,0; 8,4 и 7,6%, на 6,8; 7,0 и 6,3%.

Уровень IGM в сыворотке крови телят опытных групп понижался. На эти сроки исследований описываемый показатель снизился в сыворотке крови животных 2, 3 и 4 групп, в сторону физиологических норм, по сравнению с контрольным значением, на 0,51; 0,8 и 0,64%, на 2,14; 2,18 и 2,16%, на 1,18; 1,37 и 1,0%, на 1,34; 1,5 и 1,11%, на 0,96; 1,17 и 0,99%. Данные по исследованию динамики изменения содержания в крови телят IGE представлены в таблице 4.

К началу опытов в сыворотке крови телят всех групп был повышен уровень циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК). Показатель ЦИК в сыворотке крови телят контрольной группы по ходу опытов имел тенденцию к дальнейшему увеличению. Содержание ЦИК в сыворотке крови телят опытных групп постепенно снижалось по срокам опытов. На 10, 30, 60, 90 и 120-е дни исследований данный показатель был ниже контрольной цифры по 2, 3 и 4 группам на 7,7; 8,4 и 7,2%, на 17,1; 17,6 и 16,2%, на 18,8; 19,5 и 17,3%, на 21,0; 22,1 и 18,8%, на 18,1; 19,2 и 17,7%.

Таблица 4 Динамика изменения содержания Ig Е в сыворотке крови телят, в %

Группы Ст. показ. Сроки исследования в днях от начала опытов

Фон 10 30 60 90 120

1.Контроль - общий рацион M 129,40 139,30 156,40 164,00 167,60 165,70

±m 3,75 3,81 7,02 4,81 2,59 2,77

Р * ** *** ***

2. Общий рацион шелуха проса M 132,50 115,00 92,90 73,80 64,60 68,70

±m 3,22 3,66 1,52 1,93 1,63 1,50

Р * *** *** *** ***

3. Общий рацион шелуха гречихи M 128,50 105,30 86,40 64,30 59,30 61,40

±m 1,60 2,30 1,36 1,04 0,77 1,21

Р *** *** *** *** ***

4. Общий рацион лузга подсолнечника M 131,60 120,40 99,40 81,60 90,50 75,30

±m 2,66 2,16 1,54 1,91 1,18 1,45

Р * *** *** *** ***

Анализируя данные, представленные в разделах автореферата 2.2.2 и 2.2.3, можно прийти к заключению, что внесение в рацион откормочных телят и в рацион гусей шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации с использованием молочнокислых Lactobacterium pentoaceticum Вб-23, целлюлолитических Cellulomonas flavigena 22, пропионовокислых Propionibacterium shermanii способствует получению высококачественного кормового продукта, содержащего в своем составе биологически активные вещества, вызывающие повышение в крови, лимфатических узлах, селезенке, тимусе телят, а также в крови, селезенке, сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоцитов, стабилизацию Т-супрессоров, восстановление до уровня физиологических норм в крови IGA, IGG, IGE и ЦИК, приводящих к нормализации иммунного баланса в организме животных и птиц.

Иммуноморфологические изменения в центральных и периферических органах иммунитета телят под влиянием лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

В лимфатическом узле телят опытных групп отмечались выраженные позитивные иммуноморфологические перестройки. Показатель площади, занимаемой лимфатическими узелками без светлых центров, увеличилась, по сравнению с контрольным значением, в лимфоузле телят 2, 3 и 4-ой групп на 1,86; 3,56 и 1,67%. Площадь лимфатических узелков со светлыми центрами в лимфатическом узле телят опытных групп превысила контрольную цифру на 5,02; 8,18 и 4,37%. Мякотные тяжи лимфоузла животных опытных групп расширились, по сравнению с показателем контрольных животных на 2,8; 4,2 и 1,9%. Паракортикальная зона лимфатического узла животных 2, 3 и 4-й групп превысила значение его у животных контрольной группы на 2,8; 5,0 и 2,2%.

В селезенке телят в качестве В-зависимой зоны измеряли площадь лимфатических узелков без светлых и со светлыми центрами, в качестве Т-зависимой зоны- площадь периваскулярных лимфоидных муфт. Селезенка телят 2, 3 и 4-ой групп реагировала повышением иммунологической активности на внесение в рацион шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после бактериальной биоконверсии. Это проявлялось в виде расширения площадей В и Т-зависимых зон органа. Площадь лимфатических узелков без светлых центров в селезенке животных опытных групп увеличилась на 2,01; 4,26 и 1,85%, со светлыми центрами на 5,47; 6,95 и 4,03%, периваскулярных лимфоидных муфт на 4,24; 6,84 и 2,64%. Площадь красной пульпы органа у животных опытных групп, напротив, уступала контрольному значению на 11,8; 18,6 и 9,3%.

Шелуха проса, гречихи, лузга подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ, ПКБ способствовали активизации коркового вещества тимуса. Площадь описываемой структуры органа у телят 2, 3 и 4-ой групп увеличилась, по сравнению с показателем животных контрольной группы, на 17,3; 18,7 и 12,8%. Параллельно с расширением площади коркового вещества регистрировалось уменьшение площади мозгового вещества тимуса.

Фоновый показатель содержания миелоцитов в миелограмме животных 1-ой контрольной группы был относительно высоким. В последующие сроки опыта уровень миелоцитов в костном мозге животных 1 группы не имел существенных изменений. Содержание миелоцитов в миелограмме телят 2, 3 и 4 опытных групп снижалось. На 60-ый день опыта их уровень был ниже, по сравнению с контрольным показателем, на 1,22; 1,53 и 0,79%.

Метамиелоциты в костном мозге телят 1-ой контрольной группы выделялись на уровне от 7,2 до 9,7%. Данный показатель следует считать несколько повышенным. Их содержание в миелограмме животных опытных групп, по ходу исследований, также имело тенденцию к умеренному снижению.

Палочкоядерные нейтрофилы в миелограмме животных 1-ой контрольной группы были несколько выше физиологических норм для телят данной возрастной группы. Содержание палочкоядерных нейтрофилов в костном мозге животных опытных групп достоверно уменьшилось. На 60 и 120-ые дни данный показатель снизился, по сравнению с уровнем в контроле, по 2, 3 и 4-ой группам на 3,4; 4,5 и 2,8% и на 3,1; 3,9 и 2,3%

Общее содержание нейтрофильных клеток в миелограмме телят 1-ой контрольной группы было выше физиологических значений. К концу опыта данный показатель снизился, по сравнению с контрольной цифрой, на 8,91; 11,1 и 6,18%. Наблюдалось восстановление клеточного состава эозинофилов.

Уровень клеток эритроидного ростка в костном мозге телят 1-ой контрольной группы, во все сроки исследований, был ниже параметров физиологических норм. Содержание клеток эритроидного ростка в миелограмме животных 2, 3 и 4-ой опытных групп на 60 и 120-ые дни превысило контрольный показатель на 10,2 и 10,5%, на 14,7 и 16,8%, на 6,5 и 7,7%.

Внесение в рацион животных шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало нормализации количества лимфоидных клеток, восстановления явления моноцитоза, активизации плазмоклеточных реакций.

Результаты по исследованию динамики изменения содержания клеток в спленограмме и аденограмме телят представлены на рисунке 6.

Рисунок 6 Динамика изменения содержания клеток в спленограмме (а) и аденограмме (б) телят, %

Данные, представленные в разделе 2.2.4 автореферата свидетельствуют, что недостаточность экологического баланса, несбалансированность рационов, нарушения зоогигиенических условий содержания и другие неблагоприятные факторы, постоянно встречаемые в животноводческих фермах по откорму скота, приводят к глубоким негативным изменениям в структурах лимфоидных органов и цитологическим перестройкам в костном мозге, селезенке и лимфатических узлах, проявляющимся в виде снижения в центральном органе иммунитета костном мозге процессов пролиферации и дифференциации клеток эритроидного ростка, при активизации нейтрофилов, эозинофилов, лимфоцитов, моноцитов; изменениями в аденограмме и спленограмме в сторону лимфоцитопении, плазмоцитопении, повышения уровня макрофагов, нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов. Внесение в рацион откормочных телят шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации, восстанавливает морфологию лимфоидных органов.

Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на биохимические показатели крови телят

Внесение в рацион телят биоконверсированных кормов способствовало восстановлению до физиологических норм основных биохимических параметров. Данные по исследованию динамики изменения содержания в сыворотке крови телят показателей белкового, липидного и углеводного обменов представлены на рисунке 7.

Рисунок 7 Динамика изменения содержания альбуминов (а), креатинина (б), общего билирубина (в), холестерина (г), триглициридов (д), глюкозы (е) в сыворотке крови телят по вариантам опыта, (г%).

Влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на уровень витаминов в крови телят

Содержание витамина А в сыворотке крови телят опытных групп имело тенденцию к выраженному увеличению. Максимального значения оно достигло в сыворотке крови телят 3-й группы. Здесь его значение увеличилось, по сравнению с показателями животных контрольной группы, на10; 20; 30; 60; 90 и 120-е дни опыта, соответственно на 3,3; 15,0; 18,1; 27,0; 25,6 и 21,7 мкг/100мл. Уровень витамина А в сыворотке крови телят 2 и 4-ой групп также имел тенденцию к повышению, но по выраженности этот процесс был слабее.

Результаты исследования динамики изменения содержания жирорастворимых витаминов D и Е в крови телят представлены на рисунке 8.

Рисунок 8 Динамика изменения содержания жирорастворимых витаминов D (а) и Е (б) в крови телят

Содержание тиамина (витамина В1) в сыворотке крови телят опытных групп в процессе исследований имело тенденцию к постепенному повышению. Максимальное увеличение уровня тиамина в сыворотке крови регистрировалось также у животных 3-ей группы. Показатели телят данной группы превысили описываемые значения у животных 1, 2 и 4-й групп на 10, 20, 30, 60, 90 и 120-е дни опыта на 1,6; 0,5 и 0,8; на 3,0; 1,3 и 1,7; на 4,2; 0,9 и 1,7; на 4,7; 0,6 и 1,3; на 4,4; 0,4 и 1,1; на 3,9; 0,7 и 1,3 мкг/100 мл. Результаты исследования динамики изменения содержания витаминов В2 (рибофлавина), В5 (никотиновой кислоты), В12 (цианкобаламина) в крови телят представлены на рисунке 9.

Рисунок 9 Динамика изменения содержания витаминов В2 (рибофлавина) (а), В5 (никотиновой кислоты) (б), В12 (цианкобаламина) (в) в крови телят

Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на уровень витаминов в молоке коров

Содержание витамина А в молоке коров опытных групп имело тенденцию к увеличению. К 10, 20, 30-ым дням опыта содержание витамина А в молоке коров 2, 3 и 4-й групп превысило контрольную цифру в 1,14; 1,09 и 1,19 раза, в 1,47; 1,52 и 1,68 раза, в 1,6; 1,7 и 1,85 раза. Максимальное повышение содержания витамина А регистрировалось в молоке животных к 40 дню опыта - в 1,7; 1,8 и 1,9 раза. До конца опытов содержание витамина А в молоке коров опытных групп было выше, чем у животных контрольной группы.

Добавление в рацион коров целлюлозосодержащих кормов после бактериальной ферментации способствовало повышению в молоке жирорастворимого витамина Д. На 10, 20, 30, 40 и 60-е дни опыта данный показатель во 2, 3 и 4-й группах превысил контроль, в 1,11; 1,16 и 1,35 раза, в 1,85; 1,75 и 1,95 раза, в 2,3; 2,18 и 2,32 раза, в 2,38; 2,3 и 3,07 раза, в 2,25; 2,07 и 2,75 раза.

Указанные корма способствовали повышению уровня витамина Е в молоке коров 2, 3 и 4-й групп на 10, 30, 40 и 60-ые дни опыта в 1,12; 1,13 и 1,11 раза, в 1,23; 1,16 и 1,03 раза, в 1,33; 1,41 и 1,23 раза, в 1,14; 1,18 и 1,1 раза.

Результаты исследования динамики изменения содержания в молоке коров водорастворимых витаминов под влиянием кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, представлены на рисунке 10.

Рисунок 10. Динамика изменения содержания водорастворимых витаминов С (а), В1 (б), В2 (в), В3 (г) в молоке коров по вариантам опыта

Рис.10.2. Динамика изменения содержания водорастворимых витаминов В6 (д), В12 (е), РР (ж) в молоке коров по вариантам опыта

Следовательно, твердофазная бактериальная ферментация целлюлозосодержащих кормов способствует повышению их питательности и биологических свойств. Внесение в обычный рацион (ОР) коров кормов из шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации целлюлолитическими, пентозосбраживающими молочнокислыми и пропионовокислыми бактериями способствует повышению в молоке уровня жирорастворимых и водорастворимых витаминов.

Микробно-микологическая экология кишечника телят и гусей под влиянием лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

В процессе опытов отмечалась активизация в кишечнике телят и гусей опытных групп лактобацилл. К 10, 30, 60, 90 и 120-м дням содержание лактофлоры в кишечнике животных 2, 3 и 4 групп повысилось в 1,22; 1,34 и 1,15, в 1,4; 1,5 и 1,28, в 1,69; 1,82 и 1,51, в 1,67; 1,91 и 1,41 и в 1,61; 2,04 и 1,47 раза.

В кишечнике гусей опытных групп уровень лактобацилл превысил контроль на эти же сроки исследований в 1,19; 1,35 и 1,13, в 1,36; 1,57 и 1,26, в 1,66; 1,84 и 1,54, в 1,6; 1,84 и 1,49, в 1,44; 1,69 и 1,36 раза.

Подобным образом изменялась в кишечнике телят и гусей динамика содержания бифидобактерий (рисунок 11).

Рисунок 11 Динамика изменения содержания бифидобактерий в кишечнике телят (а), гусей (б), LGKOE/г.

Внесение в рацион телят целлюлозосодержащих кормов после бактериальной ферментации способствовало затормаживанию активности стафилококков. Их уровень в кишечнике животных 2, 3 и 4-й групп снизился к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням опыта в 1,05; 1,18; 1,23; 1,4 и 1,29 раза, в 1,12; 1,4; 1,48; 1,63 и 1,54 раза, в 1,01; 1,13; 1,18; 1,34 1,23 раза. Подобным образом изменялась динамика стафилококков в кишечнике гусей.

Результаты исследования динамики изменения содержания клостридий в кишечнике телят и гусей представлены в таблице 5.

Таблица 5 Динамика изменения содержания клостридий в кишечнике телят и гусей (М±m, lg KOE/г)

Группы Сроки исследования в днях от начала опытов

Фон 10 30 60 90 120 телята

1.Контроль - ОР 8,60±0,26 7,90±0,22 8,00±0,37 8,60±0,26 8,60±0,26 8,50±0,21

2. ОР шелуха проса 8,30±0,30 7,50±0,22 6,70±0,37 5,30±0,44 5,00±0,17 5,20±0,20

* ** *** ***

3. ОР шелуха гречихи 8,50±0,39 7,20±0,37 6,10±0,33 4,90±0,42 4,80±0,26 4,50±0,32

** *** *** ***

4. ОР лузга подсолнечника 8,40±0,24 7,60±0,24 6,90±0,33 5,50±0,22 5,30±0,25 5,40±0,24

* *** *** *** гуси

1.Контроль - ОР 6,50±0,22 6,80±0,37 6,70±0,30 6,90±0,40 6,40±0,19 6,50±0,22

2. ОР шелуха проса 6,70±0,30 5,90±0,33 4,80±0,37 4,00±0,32 3,80±0,34 3,90±0,17

* ** *** ***

3. ОР шелуха гречихи 6,40±0,26 5,50±0,21 4,30±0,11 3,60±0,07 3,40±0,21 3,50±0,20

* *** *** *** ***

4. ОР лузга подсолнечника 6,60±0,40 6,00±0,32 5,10±0,25 4,20±0,12 4,30±0,20 4,50±0,32

* ** ** **

Данные по исследованию динамики изменения содержания в кишечнике телят и гусей эшерихий и псевдомонов представлены на рисунке 12.

Рисунок 12 Динамика изменения содержания эшерихий (а,б), псевдомонов (в,г) в кишечнике телят (а, в), гусей (б, г)

Внесение в рацион телят описываемых кормов способствовало восстановлениюв кишечнике уровня микрогрибов Candida. При этом содержание микрогрибов Candida в кишечнике телят 2, 3 и 4-й групп снизилось по срокам опыта и уступало показателю контроля к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням в 1,06; 1,11 и 1,01 раза, в 1,32; 1,42 и 1,23 раза, в 1,56; 1,91 и 1,43 раза, в 1,86; 2,08 и 1,77 раза, в 1,94; 2,11 и 1,84 раза. В кишечнике телят контрольной группы в незначительном количестве выделялись микрогрибы из родов Aspergillus и Penicillium, что было вызвано нарушением микробной экологии кишечника животных и созданием благоприятных условий для их размножения в прямой кишке. Внесение в рацион телят шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после бактериальной ферментации способствовало выведению микрогрибов описываемых родов из кишечника. Содержание микрогрибов из рода Candida в кишечнике гусей опытных групп изменялось подобно их изменению в кишечнике телят.

Микроскопические грибы из родов Aspergillus, Penicillium из кишечника гусей не выделялись.

Данные, представленные в разделе 2.2.8 автореферата свидетельствуют, что целлюлозосодержащие корма (шелуха проса, гречихи, лузга подсолнечника) после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ, внесенные в состав основного рациона, способствуют профилактике дисбактериозов, проявляющихся в виде активизации в кишечнике телят и гусей нормофлоры (бифидобактерий и лактобацилл) и затормаживания размножения условно- патогенных микроорганизмов (стафилококов, клостридий, эшерихий, псевдомонов) и микроскопических грибов.

Влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на биохимические показатели качества мяса телят

Внесение в рацион телят откормочных групп шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало восстановлению биохимических показателей и получению высококачественного экологически чистого мяса (таблица 6).

Таблица 6 Биохимические показатели качества мяса телят (M±m)

Биохимические показатели Группы

1 2 3 4

Сухое вещество, % 21,30±0,84 23,70±1,38 24,30±0,67* 23,10±1,72

Аммиачный азот, в % 75,80±1,46 70,10±2,39 69,70±2,08 72,30±2,71

Жир, % 2,80±0,07 3,10±0,33 3,30±0,25 3,60±0,40

Белок, % 15,90±0,33 17,70±0,66 19,20±0,97* 17,90±1,01

ЛЖК, мк 3,14±0,23 2,35±0,15* 2,20±0,12* 2,84±0,25

Влага, % 75,4±4,15 71,60±3,19 70,40±4,68 72,90±4,23

Зола, % 0,810,07± 1,15±0,07* 1,18±0,10* 0,97±0,07

Влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на продуктивные показатели гусей родительского стада

Динамика изменения яйценоскости гусей

Средняя яйценоскость гусынь 1-й контрольной группы в феврале составила 3,29 шт. Показатель яйценоскости гусей опытных групп в этом месяце несколько увеличился и превысил контрольный уровень по 2, 3 и 4-ой группам в 1,17; 1,25 и 1,11 раза. Повышение яйценоскости гусей продолжалось по срокам исследований. Максимальным этот процесс во всех группах был в марте. В этом месяце, по сравнению с показателем предыдущего месяца, яйценоскость гусей контрольной группы увеличилась в 4,59 раза, а 2, 3 и 4-ой опытных групп в 4,34; 3,87 и 4,49 раза. При этом показатели яйценоскости гусей опытных групп превысили контрольный уровень в 1,1; 1,14 и 1,09 раза.

В апреле-мае яйценоскость гусей имела тенденцию к снижению, по сравнению с показателем предыдущего срока опыта. В июне наблюдалось завершение яйцекладки гусей. В этот период показатель гусей 1-й контрольной группы составил всего 2,12 яиц. Яйценоскость гусей 2, 3 и 4-й опытных групп продолжала превышать значения их в контроле в 1,24; 1,36 и 1,16 раза.

Средняя яйценоскость гусей 1-й контрольной группы на среднюю несушку за все месяцы продуктивного цикла составила 45,46 яиц. Показатели средней яйценоскости птиц 2, 3 и 4-й опытных групп превысили контрольный уровень в 1,12 раза, в 1,15 раза и в 1,11 раза.

Динамика изменения морфологических, биохимических показателей и инкубационных качеств яиц гусей

Масса яиц гусынь 2, 3 и 4-й опытных групп была выше, чем в контроле, соответственно в 1,02; 103 и 1,03 раза. При этом увеличение массы белка в яйцах гусей опытных групп было незначительным: в 1,005 раза, в 1,007 раза и в 1,007 раза. Данный процесс происходил в основном за счет увеличения массы желтка в яйцах гусынь опытных групп. Описываемый показатель в яйцах птиц 2, 3 и 4-й групп превышал контрольный уровень гусей 1-й группы в 1,05; 1,06 и 1,07 раза.

Показатель массы скорлупы у птиц 2, 3 и 4-й опытных групп был выше, по сравнению с его значением в контрольной группе, в 1,11; 1,11 и 1,1 раза.

Параллельно с увеличением массы скорлупы яиц у гусынь 2, 3 и 4-й групп отмечалось увеличение толщины скорлупы - в 1,04; 1,07 и 1,02 раза.

Внесение в рацион гусынь шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало повышению показателя ХАУ. Его значение у птиц опытных групп повысилось, по сравнению с данными гусынь контрольной группы, соответственно по 2, 3-й группам в 1,02; 1,03 раза, а по 4-й группе - соответствовало контрольному уровню. Показатель удельной плотности яиц гусынь опытных групп незначительно был выше, по сравнению с его значением в контроле.

Исследование составных частей яиц показало, что целлюлозосодержащие корма после твердофазной бактериальной ферментации способствовали снижению уровня белка по 2, 3-й группам в 1,03; 1,04 раза, а по 4-й группе данный показатель не изменялся. Уровень желтка в яйце птиц опытных групп имел тенденцию к увеличению - в 1,02; 1,03 и 1,04 раза. Показатель доли скорлупы у гусынь опытных групп увеличился в 1,08; 1,08 и 1,06 раза. Отношение массы белка к массе желтка снизилось в 1,05; 1,07 и 1,07 раза.

Данные по изучению влияния шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации на содержание в яйцах гусей каратиноидов, витаминов А и В2 представлены на рисунке 13, а показатели инкубационных качеств яиц в таблице 7.

Рисунок 13 Содержание в яйцах гусей каратиноидов, витаминов А и В2 по вариантам опыта.

Таблица 7 Инкубационные качества яиц гусей (М±m/ Cv,%)

Показатели Группы

1 2 3 4

Выход инкубационных яиц 93,40±0,51 97,90±1,73 98,20±1,16* 97,40±1,47*

1,22 3,96 2,64 3,37

Оплодотворенность 85,98±2,48 90,66±0,89 92,16±1,02* 90,48±1,28

6,45 2,21 2,48 3,16

Вывод гусят 64,36±1,21 68,26±2,68 70,85±2,29* 60,08±0,61*

4,21 8,79 7,23 2,25

Выводимость 73,62±2,18 78,08±1,98 78,54±0,97* 77,72±1,36

6,63 5,68 2,76 3,91

Затраты корма, переваримость и использование питательных веществ корма гусями родительского стада

Показатели затрат кормов, переваримости и использования питательных веществ корма гусями родительского стада представлены на рисунке 14.

Рисунок 14 Затраты корма, переваримость и использование питательных веществ корма гусями родительского стада

Влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на продуктивные качества гусят

Показатели живой массы гусят-самцов с суточного и до трехнедельного возраста по группам не имели существенных различий. С трехнедельного возраста в рацион гусят вносили целлюлозосодержащие корма, подвергнутые твердофазной бактериальной ферментации. К шестинедельному возрасту отмечались некоторые различия в прибавлении массы птиц-самцов. На этот срок исследований показатель живой массы птиц 2, 3 и 4-й групп был выше контрольной цифры на 130,7; 160,4 и 168,4 г. В девятинедельном возрасте самцов сохранялась такая же тенденция в изменении живой массы и она превышала значения ее в контроле на 187,8; 212,7 и 232,0 г.

Живая масса самок с суточного до шестинедельного возраста также не имела существенных отличий. В последующие сроки исследований отмечалось превышение описываемого показателя птиц опытных групп. К шестинедельному возрасту живая масса самок 2, 3 и 4-й групп была выше, по сравнению с контрольным значением на 129,4; 174,0 и 200,5 г. В конце исследований (9 недель) показатели живой массы самок опытных групп превысили контрольный параметр на 129,0; 191,6; 214,9 г.

Данные по исследованию затрат корма, переваримости и использования питательных веществ корма гусятами представлены на рисунке 15.

Рисунок 15 Затраты корма, переваримость и использование питательных веществ корма гусятами

Результаты исследования влияния кормов после твердофазной бактериальной ферментации на показатели качества мяса гусят, по результатам анатомической разделки тушек самцов и самок, представлены в таблице 8.

Таблица 8 Показатели качества мяса гусят по результатам анатомической разделки тушек (г)

Показатели Ст. показ. Группы

1 2 3 4

1 2 3 4 5 6 самцы

Живая масса M 4098,70 4286,50 4311,40* 4330,70*

±m 49,87 56,83 48,66 54,05

Масса потрошенной тушки M 2497,60 2659,70 2687,60 2714,30

±m 122,60 63,83 60,14 52,67

Масса мышц M 1118,90 1318,00 1332,60* 1304,60*

±m 33,52 33,77 47,87 38,18

Кожа с подкожным жиром M 558,70 594,40 606,70 626,40

±m 6,80 20,64 30,30 9,06

Масса внутреннего жира M 168,40 179,80 181,30 196,60*

±m 3,31 6,61 8,53 7,48

Масса съедобных частей M 2197,20 2395,00** 2412,50* 2407,80*

±m 24,10 33,09 39,88 51,82

Масса костяка M 558,70 573,90 576,40* 570,60

±m 18,83 17,10 8,54 12,17

Отношение массы мышц к массе костяка 2:1 2,29:1 2,31:1 2,28:1 самки

Живая масса M 3594,80 3723,80 3786,40 3809,70

±m 53,29 83,62 76,95 88,04

Масса потрошенной тушки M 2108,40 2264,70 2299,20* 2320,60*

±m 38,54 64,38 45,17 34,23

Масса мышц M 990,50 1118,60 1133,40 1101,80

±m 42,12 36,69 58,77 47,38

Кожа с подкожным жиром M 518,90 544,50* 567,80* 594,30***

±m 6,07 5,47 11,72 4,78

Масса внутренного жира M 98,50 110,70 114,30 128,90*

±m 4,86 5,16 4,13 2,79

Масса съедобных частей M 1832,30 1994,00 2026,20* 2005,70

±m 36,55 52,59 17,02 61,51

Масса костяка M 506,80 525,40 532,70* 523,00

±m 6,84 4,68 8,57 6,72

Отношение массы мышц к массе костяка 1,95:1 2,12:1 2,13:1 2,11:1
Заказать написание новой работы



Дисциплины научных работ



Хотите, перезвоним вам?