Гематологические показатели и воспроизводительная способность первотелок с задержанием последа - Статья

Изменения содержания гемоглобина в крови в течение беременности отражают потребность матери и плода в гемоглобине и способность последнего к усвоению кислорода. Животным 1-й группы применяли комплекс антибиотических веществ, традиционно используемых в хозяйстве (n=15, группа 1а) или тилозинокар (n=11, группа 1б). Кровь для исследования брали за 1-2 мес. до отела, затем за 7-4 дней до отела и в день отела, а в последующем - на 11-13, 24-27 и 40-45-ый дни после отела. Корреляционный анализ показателей крови сделан в целом по всем подопытным животным по двум периодам: до отела (первые 3 исследования) и после отела (последующие 3 исследования), а также в отдельности по двум группам и по каждому исследованию. В послеродовой период количество эритроцитов у животных 2-ой группы почти не изменилось, а у животных 1-ой группы несколько снизилось.В это время у животных 1-ой группы их было существенно больше, чем за 1-2 мес. и за 7-4 дней до отела (P<0,05 и P<0,01), а у животных 2-ой - больше, чем за 7-4 дней до отела (P<0,01). Увеличение содержания эозинофилов сопровождалось снижением всех форм нейтрофилов (r=-0,51; P<0,01) и в наибольшей мере палочкоядерных и сегментоядерных (r=-0,32 и-0,47; P<0,01). После первого осеменения оплодотворилось 80,7% животных 1-й группы и 47,6% животных 2-й группы. Для оплодотворения всех животных 2-й группы потребовалось 1-4 осеменения, а 1-й группы - 1-2 осеменения. Интервал от отела до оплодотворения у коров 1-й группы не превысил стандарта и на 73,9 дня оказался короче, чем у животных 2-й группы (Р<0,01).У первотелок с задержанием последа морфологические показатели крови и концентрация гемоглобина в конце стельности и после отела изменялись в пределах нормы. В конце стельности и в день отела гемоглобина содержалось больше, чем в послеродовой период. В послеродовой период, напротив, отмечалось снижение лейкоцитов (P<0,01), причем наиболее существенное - палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов (P<0,01), при одновременном увеличении эозинофилов и лимфоцитов (P<0,01). Однако среднеклеточная концентрация гемоглобина в эритроците после отела ниже была у животных 1-ой группы, что может быть связано с более частым применением антибиотических веществ в первые дни после отела. Многократное применение тилозинокара для устранения осложнений хотя и обеспечивало высокий уровень оплодотворяемости после первого осеменения, но задерживало проявление половой цикличности и удлиняло период от отела до оплодотворения (1б группа).

Содержание лейкоцитов в крови подопытных животных представлено в табл. 3.

Из всех осложнений родового акта у первотелок задержание последа наиболее широко распространено. Это заболевание является частой причиной развития воспалительных процессов в родовых путях, последующего снижения продуктивности и воспроизводительной способности и нередко приводит к преждевременной выбраковке животных.

В Республике Беларусь основным методом лечения коров с задержанием последа является оперативное (мануальное) отделение оболочек. Однако при таком методе лечения повреждаются ткани матки, происходит инфицирование их, и это способствует развитию тяжелой формы метрита или параметрита. Эти осложнения могут сопровождаться изменением общего состояния животных, нарушением его гомеостазиса.

В зарубежной практике чаще используются консервативные методы лечения больных животных. Они сводятся к применению нейротропных веществ, гормональных и других биологически активных лекарственных средств с целью стимуляции спонтанного отделения плаценты. При отсутствии эффекта последующее лечение животных осуществляется путем однократного или регулярного применения антибиотических средств, которые вводятся в матку для предотвращения развития микроорганизмов, разложения (гниения) плаценты и развития тяжелого воспалительного процесса. Для однократного применения используют препараты в форме антисептической жидкости, а при многократном применении вводят в матку препараты в форме таблеток, палочек, суппозиториев и т.д.

Цель работы - выяснить характер изменений гематологических показателей и определить уровень воспроизводительной способности первотелок с задержанием последа с учетом применяемого способа лечения.

Анализ источников

В зарубежной практике иногда после выявления заболевания лечение животного не предпринимается до тех пор, пока не проявятся признаки метрита [13, с. 297; 14, с. 414]. Хотя у ряда коров репродуктивная функция восстанавливается и без лечения, но такая практика не очень популярна изза вероятности развития воспалительных процессов в половых органах и токсемии.

Оперативное отделение последа, независимо от того, в какое время оно проводится, считается потенциально опасным для животного [11, с. 74; 14, с. 413], так как повреждаются обширные участки матки, и это создает предпосылки для интенсивного инфицирования тканей.

Нередко ослабевает резистентность животного. И на фоне нарушения сократительной функции матки и задержки в ее полости лохий и разрушающихся тканей, возникают условия для быстрого размножения микроорганизмов, усиления их вирулентности и развития тяжелого воспалительного процесса. Срок присутствия микроорганизмов в матке увеличивается.

Поэтому при этой патологии наиболее популярным становится консервативное лечение.

Первым этапом его является стимулирование сократительной функции матки механическим воздействием на нее (массаж через прямую кишку, осторожное скручивание свисающей части последа и потягивание из стороны в сторону), электрическими стимулами или введением специфически действующих гормональных и других средств.

Ряд авторов для предупреждения задержания последа или стимулирования отделения его рекомендует коровам вводить внутримышечно простагландин Ф2а или синтетический аналог его с 30 ЕД окситоцина не позднее 2-3 ч после рождения плода, а также карбохолин 0,01% - 1,5 мл, прозерин 0,5% - 1,5 мл, ацеклидин - 3-5 мл, 1%-й раствор сферофезина бензоната - 4-10 мл, 1%-й раствор бревиколлина [3, с. 528-529; 12, с. 47-51].

Введение антибиотических веществ направлено на предотвращение развития в матке инфекции и воспалительного процесса и проявления признаков токсемии или септицемии. Рекомендовано два способа. Один способ заключается в ежедневном введении в матку болюсов (суппозиториев, палочек и т.д.), содержащих антибиотики, до отделения оболочек.

Другой заключается в однократном введении большого объема (3-4 л) раствора антибиотических веществ в матку через 24-36 ч после родов [10, с. 114]. Оба способа дают удовлетворительные результаты.

Это убедительно доказано и работами кафедры физиологии, биотехнологии и ветеринарии УО «Белорусская государственная сельскохозяйственная академия [1, с. 9 и 8, с. 6-11]. После отделения оболочек необходимость последующего лечения будет зависеть от отсутствия или проявления осложнений.

Все предлагаемые консервативные методы профилактики задержания последа после завершения второй стадии родов требуют определенных экономических затрат и не всегда гарантируют положительный исход.

Для прогнозирования проявления патологии или контроля состояния больных животных анализ крови является одним из наиболее распространенных клинико-лабораторных исследований в ветеринарной практике. Изучение показателей периферической крови составляет общепринятый компонент диагностического обследования и регулярного наблюдения за животными [6].

Кровь беременных животных претерпевает значительные изменения. Общее количество ее к концу беременности увеличивается на 20-25%. С увеличением сроков беременности повышается содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина.

По данным А.А. Сысоева (1978), в течение 4 мес. стельности количество эритроцитов повышается с 5,64-5,77·1012/л до 6,00·1012/л. Число лейкоцитов в 1 мес. стельности составляет 7,37·109/л, во время родов достигает 8,57·109/л. первотелка плацента животное антибиотический

Увеличивается количество гемоглобина до 100 г/л, в начале беременности - 94 г/л. Отмечается распад эритроцитов, при этом освобождается железо, необходимое для бурного роста плода [5, с. 54].

Изменения содержания гемоглобина в крови в течение беременности отражают потребность матери и плода в гемоглобине и способность последнего к усвоению кислорода.

На первом этапе беременности, когда образуется плацентарный круг кровообращения и постоянно возрастают потребности зародыша в кислороде, содержание гемоглобина в материнской крови падает, т.к. он используется для построения гемоглобина плода. Это же происходит и в момент максимального роста плода (7-9-ый месяц стельности).

В середине беременности, когда существует хорошая плацентарная связь, а рост плода ограничен, а также в самом конце беременности, вследствие начала дегенеративных изменений в плаценте, может иметь место повышение уровня гемоглобина в крови. Увеличение же насыщенности эритроцитов гемоглобином необходимо для более эффективного переноса кислорода зародышу.

Снижение содержания гемоглобина и эритроцитов во время беременности может быть связано с гидремией и увеличением объема циркулирующей крови после установления плацентарного кровообращения [4; 9, с. 113-120].

Лейкоциты крови играют в организме защитную, трофическую и транспортную роль. Количество их в крови у первотелок составляет 4,5-12·109/л. Различные факторы внешней или внутренней среды могут привести как к лейкоцитозу, так и к лейкопении. По мнению ряда авторов, у стельных животных, особенно в конце стельности, наблюдается физиологический лейкоцитоз [6; 2, с. 56-58].

А.А. Сысоев (1978) отмечал, что по количеству лейкоцитов в крови можно судить об уровне защитных механизмов организма. В начале беременности количество лейкоцитов в периферической крови снижается, затем оно несколько повышается и достигает высокого уровня во время родов. Общее количество лейкоцитов в крови коров во время беременности находится в пределах 5,74-5,95·109/л. После родов количество лейкоцитов снижается [2, с. 56-58].

Методы исследования

Работа выполнена на кафедре физиологии, биотехнологии и ветеринарии УО «Белорусская государственная сельскохозяйственная академия» и РУП «Учхоз БГСХА».

По мере отелов и выявления задержания последа формировали две группы первотелок черно-пестрой и голштинской породы (по 26 животных).

Лечение первотелок 1-й группы проводили консервативным методом с применением экспериментального препарата - суппозиториев, в состав которых входили линкоспектин, тилазина тартрат, гентамицин сульфат и витамин В1. Начинали лечение с первого-второго дня после завершения второй стадии родов (чаще через 6-18 ч).

После подготовки животного суппозитории (в количестве 2-3 шт.) вводили в матку между эндометрием и хорионом. Повторяли введение 2-4 раза с промежутком 24-48 ч до отделения оболочек.

В ряде случаев животным дополнительно вводили окситоцин в дозе 50-70 ЕД. До и после введения суппозиториев наружные половые органы и свисающую часть последа обрабатывали дезинфицирующим раствором. Если в течение суток послед не отделялся самостоятельно, то делали массаж матки через прямую кишку, подтягивая ее за свисающую часть последа.

В случае отсутствия успеха и при массаже матки введение суппозиториев повторяли. После извлечения последа (или его спонтанного отделения) суппозитории опять закладывали в матку, а если руку уже невозможно было ввести в матку изза сужения канала ее шейки, то свечи осторожно проталкивали через цервикальный канал в полость матки под контролем указательного пальца руки.

У животных второй группы проводили оперативное отделение плодных оболочек с последующим введением в полость матки фуразолидоновых палочек в количестве 3-4 шт. Отделение проводили через 6-24 ч с момента выведения плода (как правило, через 8-14 ч).

При проявлении клинических признаков эндометрита (спустя 8-15 дней после отела) лечение животных обеих групп продолжали путем внутриматочного введения жидких лекарственных форм.

Животным 1-й группы применяли комплекс антибиотических веществ, традиционно используемых в хозяйстве (n=15, группа 1а) или тилозинокар (n=11, группа 1б). Лечение животных 2-й группы продолжали путем применения комплекса антибиотических веществ.

Контроль состояния внутренних половых органов осуществляли периодически (в 1-5, 10-15, 20-25 и 30-35-ый дни после отела) путем ректальной пальпации до полного выздоровления животного и завершения инволюции. Диаметр шейки определяли, как описано Медведевым Г.Ф. [9, с. 56-58].

Для оценки физиологического состояния подопытных первотелок определяли содержание клеток крови (эритроцитов и тромбоцитов) и гемоглобина с помощью гематологического анализатора Medonic CA 620 (Швеция). Количество лейкоцитов определяли методом подсчета их в камере Горяева [4 и 6].

Лейкограмму определяли методом визуальной микроскопии сухих, фиксированных, окрашенных по Романовскому-Гимза мазков крови с дифференцированным подсчетом лейкоцитов и выражением лейкограммы как процентного отношения между отдельными видами лейкоцитов крови [4].

Кровь для исследования брали за 1-2 мес. до отела, затем за 7-4 дней до отела и в день отела, а в последующем - на 11-13, 24-27 и 40-45-ый дни после отела.

Математическая обработка данных проведена с использованием стандартных программ. Корреляционный анализ показателей крови сделан в целом по всем подопытным животным по двум периодам: до отела (первые 3 исследования) и после отела (последующие 3 исследования), а также в отдельности по двум группам и по каждому исследованию.

В работе приводятся наиболее значимые корреляционные связи между гематологическими показателями и между ними и показателями воспроизводительной способности животных, а также характер линейных изменений гематологических показателей по периодам.

Основная часть

Содержание эритроцитов и тромбоцитов и концентрация гемоглобина в крови подопытных животных показаны в табл. 1 и 2.

Количество эритроцитов на протяжении исследований варьировало от 5,9 до 7,0·1012/л. У животных 2-ой группы за 1-2 мес. до отела количество их было значительно меньше, чем у животных 1-ой группы (Р<0,05). Однако за 4-7 дней до отела различия сгладились и не были существенными. Отсутствовали различия между группами и в день отела, т.е. до начала лечения.

В это время содержание их у животных обеих групп было существенно меньше (6,4 и 6,2·1012/л), чем за 1-2 мес. до отела (6,9 и 6,5·1012/л; Р<0,05). Но наиболее низкие показатели отмечены на 11-13-ый день после отела (5,9-6,1·1012/л). В послеродовой период количество эритроцитов у животных 2-ой группы почти не изменилось, а у животных 1-ой группы несколько снизилось. В конце опыта различия между группами были очень незначительными.

Среднеклеточный объем эритроцитов выражает отношение объема эритроцитов к их числу в одном и том же объеме крови. Величина отношения может изменяться в течение жизни.

В нашем опыте при первом исследовании средний объем клеток был выше у животных второй группы (Р<0,01). Но за 4-7 дней до отела этот показатель у животных 1-ой группы значительно увеличился (Р<0,05). Поэтому различия между группами в это время и в день отела отсутствовали.

В послеродовой период явно выраженные изменения этого показателя наблюдались только у животных 1-ой группы. У них сначала наблюдалось увеличение показателя к 11-13-му дню, затем существенное снижение, особенно выраженное у животных 1а группы. В конце опыта различия между группами практически исчезли.

Ширина распределения эритроцитов, относительная (в %) и абсолютная, является количественной оценкой разброса эритроцитов по объему. Она наглядно в цифрах помогает выяснить степень анизоцитоза. Рассчитывается из кривой распределения эритроцитов. В нашем опыте относительная величина была довольно стабильной у всех подопытных животных. Лишь при первом исследовании значительно ниже она была у нетелей 2-ой группы (Р<0,05).

Абсолютный показатель, напротив, у них был выше (Р<0,05). Заметные изменения его наблюдались в течение первого месяца после отела и происходили в соответствии с изменениями среднеклеточного объема эритроцитов. На 40-45-ый день после отела различия между группами отсутствовали.

Таблица 1. Содержание эритроцитов и концентрация гемоглобина в крови подопытных животных.

Показатели n Период исследования крови

За 1- 2 мес. до отела За 7-4 дней до отела В день отела 11-13-й день после отела 24-27-й день после отела 40-45-й день после отела

Количество эритроцитов, 1012/л 1 1а 1б 2 6,9 ± 0,1 7,0 ± 0,2 6,8 ± 0,2 6,5 ± 0,1 6,7 ± 0,1 6,8 ± 0,2 6,6 ± 0,2 6,4 ± 0,1 6,4 ± 0,2 6,4 ± 0,3 6,4 ± 0,3 6,2 ± 0,1 6,0 ±0,2 5,9 ± 0,1 6,1 ± 0,3 6,1 ± 0,1 6,1 ± 0,1 6,1 ± 0,1 6,0 ± 0,2 6,1 ± 0,1 6,1 ± 0,1 6,0 ± 0,2 6,1 ± 0,1 6,2 ± 0,1

Средний объем эритроцита, fl 1 1а 1б 2 43,4 ± 0,6 43,3 ± 0,8 43,6 ± 0,8 45,8 ± 0,4 45,5 ± 0,6 46,2 ± 0,5 44,7 ± 1,1 45,2 ± 0,4 45,6 ± 0,9 46,4 ± 1,3 44,7 ± 0,9 45,6 ± 0,5 47,3 ± 0,6 47,0 ± 0,8 47,7 ± 0,9 45,4 ± 0,6 43,4 ± 0,4 42,7 ± 0,5 44,3 ± 0,6 44,7 ± 0,6 44,2 ± 0,6 43,4 ± 0,5 45,4 ± 1,2 44,2 ± 0,5

Ширина распределения эритроцитов, % 1 1а 1б 2 19,8 ± 0,3 19,8 ± 0,3 19,8 ± 0,4 18,8 ± 0,2 19,1 ± 0,2 18,8 ± 0,2 19,5 ± 0,4 19,1 ± 0,2 19,5 ± 0,5 19,8 ± 0,7 19,2 ± 0,3 18,8 ± 0,2 18,8 ± 0,2 18,9 ± 0,3 18,8 ± 0,3 18,7 ± 0,2 19,3 ± 0,1 19,5 ± 0,2 19,1 ± 0,2 19,0 ± 0,2 19,1 ± 0,1 19,2 ± 0,2 19,0 ± 0,2 19,0 ± 0,1

Ширина распределения эритроцитов, абсолют. 1 1а 1б 2 32,6 ± 0,5 32,4 ± 0,6 32,8 ± 0,6 34,0 ± 0,4 34,0 ± 0,5 34,4 ± 0,4 33,4 ± 0,8 33,7 ± 0,3 34,7 ± 1,1 35,8 ± 1,8 33,1 ± 0,7 33,7 ± 0,5 35,5 ± 0,5 35,3 ± 0,7 35,7 ± 0,8 33,5 ± 0,6 32,2 ± 0,4 31,7 ± 0,5 32,9 ± 0,5 33,3 ± 0,5 32,9 ± 0,5 32,1 ± 0,4 33,9 ± 1,1 32,4 ± 0,5

Гематокрит, % 1 1а 1б 2 29,9 ± 0,5 30,1 ± 0,5 29,6 ± 0,9 28,9 ± 0,5 30,4 ± 0,7 31,5 ± 0,9 28,9 ± 0,9 29,2 ± 0,5 29,3 ± 1,2 29,8 ± 1,8 28,6 ± 1,1 28,5 ± 0,4 28,5 ± 0,8 27,9 ± 0,6 29,3 ± 1,8 27,7 ± 0,4 26,5 ± 0,6 26,2 ± 0,6 26,8 ± 1,0 27,6 ± 0,5 26,9 ± 0,6 26,1 ± 0,8 27,8 ± 0,9 28,0 ± 0,5

Концентрация гемоглобина, г/л 1 1а 1б 2 106,0 ± 2,3 106,2 ± 2,1 105,7 ± 3,9 101,6 ± 1,7 111,2 ± 1,9 113,9 ± 2,8 107,7 ± 1,8 104,4 ± 1,6 106,6 ± 3,6 107,4 ± 5,4 105,5 ± 3,8 106,1 ± 1,7 102,0 ± 3,0 99,7 ± 2,0 105,2 ± 6,5 102,7 ± 1,7 97,4 ± 2,3 95,7 ± 2,6 99,9 ± 3,8 102,7 ± 1,4 97,6 ± 2,0 96,9 ± 3,0 98,6 ± 2,5 104,1 ± 1,6

Среднеклеточный гемоглобин, пг 1 1а 1б 2 15,4 ± 0,2 15,3 ± 0,2 15,5 ± 0,3 16,2 ± 0,1 16,5 ± 0,2 16,7 ± 0,1 16,2 ± 0,4 16,1 ± 0,1 16,7 ± 0,3 16,8 ± 0,4 16,5 ± 0,3 16,6 ± 0,2 16,9 ± 0,2 16,8 ± 0,2 17,1 ± 0,3 16,8 ± 0,2 16,0 ± 0,2 15,6 ± 0,2 16,6 ± 0,3 16,8 ± 0,2 16,1 ± 0,2 16,1 ± 0,2 16,1 ± 0,4 16,5 ± 0,2

Среднеклеточная концентрация гемоглобина, г/л 1 1а 1б 2 354,2 ± 2,4 353,3 ± 2,1 355,3 ± 4,2 351,4 ± 1,9 363,6 ± 2,6 362,7 ± 2,9 364,7 ± 4,4 352,1 ± 2,3 366,7 ± 3,2 364,0 ± 4,0 370,1 ± 4,8 364,7 ± 3,5 359,0 ± 2,5 358,3 ± 3,1 359,8 ± 4,0 367,8 ± 3,6 368,9 ± 3,6 365,7 ± 4,5 373,7 ± 5,1 375,1 ± 4,8 365,1 ± 3,3 371,5 ± 3,9 356,4 ± 4,4 376,5 ± 4,1

Таблица 2. Содержание тромбоцитов в крови подопытных животных

Показатели n Период исследования крови

За 1-2 мес. до отела За 7-4 дней до отела В день отела 11-13 день после отела 24-27 день после отела 40-45 день после отела

Количество тромбоцитов, 109/л 1 1а 1б 2 254,5 ± 16,9 259,2 ± 20,2 248,3 ± 22,0 207,1 ± 12,6 228,9 ± 13,3 211,9 ± 11,8 250,5 ± 24,1 220,3 ± 12,2 217,2 ± 12,8 200,0 ± 15,3 239,2 ± 18,1 200,3 ± 14,6 238,7 ± 15,3 239,9 ± 18,2 237,0 ± 26,4 226,3 ± 15,5 269,7 ± 20,2 277,1 ± 25,5 258,6 ± 29,5 231,1 ± 23,2 245,9 ± 15,5 258,1 ± 20,7 229,3 ± 22,5 220,5 ± 16,8

Средний объем тромбоцитов, фл. 1 1а 1б 2 6,8 ± 0,1 6,8 ± 0,2 6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,5 ± 0,1 6,8 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,9 ± 0,1 7,0 ± 0,1 6,8 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,8 ± 0,1 7,1 ± 0,1 6,9 ± 0,1 7,0 ± 0,1 7,0 ± 0,03 7,0 ± 0,1 6,7 ± 0,1 6,8 ± 0,1 6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,6 ± 0,1

Ширина распределения тромбоцитов, % 1 1а 1б 2 9,1 ± 0,2 9,1 ± 0,2 9,0 ± 0,2 9,3 ± 0,1 9,0 ± 0,1 9,2 ± 0,1 8,7 ± 0,1 9,2 ± 0,1 9,3 ± 0,1 9,3 ± 0,1 9,4 ± 0,2 9,1 ± 0,1 9,3 ± 0,1 9,2 ± 0,1 9,5 ± 0,1 9,2 ± 0,1 9,4 ± 0,1 9,4 ± 0,1 9,4 ± 0,2 9,0 ± 0,1 9,2 ± 0,1 9,1 ± 0,2 9,3 ± 0,2 8,9 ± 0,1

Компактный объем тромбоцитов, % 1 1а 1б 2 0,11 ± 0,01 0,11 ± 0,01 0,12 ± 0,02 0,11 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,02 0,12 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,01 0,15 ± 0,02 0,10 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,01 0,14 ± 0,02 0,12 ± 0,01 0,17 ± 0,02 0,19 ± 0,02 0,15 ± 0,02 0,13 ± 0,02 0,12 ± 0,01 0,11 ± 0,01 0,13 ± 0,02 0,10 ± 0,01

Большие тромбоциты, % 1 1а 1б 2 11,5 ± 0,6 12,5 ± 0,4 10,6 ± 0,7 10,9 ± 0,4 10,5 ± 0,5 10,8 ± 0,7 9,9 ± 0,2 10,7 ± 0,3 10,4 ± 0,7 10,2 ± 0,9 10,6 ± 1,1 10,2 ± 0,3 11,3 ± 0,5 10,5 ± 0,6 12,3 ± 0,7 10,7 ± 0,4 11,1 ± 0,4 10,8 ± 0,4 11,7 ± 0,7 10,2 ± 0,2 10,9 ± 0,7 10,5 ± 0,5 11,4 ± 1,1 9,7 ± 0,2

Таблица 3. Содержание лейкоцитов и лейкограмма в крови подопытных животных

Показатели n Период исследования крови

За 1- 2 мес. до отела За 7-4 дней до отела В день отела 11-13 день после отела 24-27 день после отела 40-45 день после отела

Количество лейкоцитов, 109/л 1 1а 1б 2 7,8 ± 0,1 7,8 ± 0,1 7,9 ± 0,1 7,9 ± 0,1 8,2 ± 0,1 8,2 ± 0,1 8,2 ± 0,2 8,1 ± 0,1 8,8 ± 0,1 9,0 ± 0,1 8,6 ± 0,2 8,7 ± 0,2 8,3 ± 0,1 7,9 ± 0,1 8,8 ± 0,2 8,6 ± 0,2 7,7 ± 0,1 7,6 ± 0,1 7,9 ± 0,2 8,1 ± 0,1 7,4 ± 0,1 7,4 ± 0,1 7,4 ± 0,1 7,8 ± 0,1

Базофилы, % 1 1а 1б 2 0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0,1 ± 0,05 0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 0,12 ± 0,06 0,07 ± 0,06 0,20 ± 0,1 0,10 ± 0,05 0,12 ±0,06 0,13 ± 0,09 0,09 ± 0,08 0,10 ± 0,05 0,15 ± 0,07 0,13 ± 0,09 0,20 ± 0,1 0,1 ± 0,05 0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0

Эозинофилы, % 1 1а 1б 2 4,4 ± 0,2 4,3 ± 0,3 4,6 ± 0,3 4,0 ± 0,2 3,9 ± 0,2 3,9 ± 0,2 3,8 ± 0,3 3,8 ± 0,2 4,1± 0,3 3,7 ± 0,2 4,6 ± 0,5 3,9 ± 0,2 4,0 ± 0,2 4,1 ± 0,3 3,9 ± 0,3 4,1 ± 0,2 6,4 ± 0,4 6,5 ± 0,6 6,3 ± 0,4 7,3 ± 0,4 6,8 ± 0,4 6,6 ± 0,6 7,1 ± 0,4 8,3 ± 0,3

Нейтрофилы, % Миелоциты, % 1 1а 1б 2 0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 0 0 0 0,04 ± 0,03 0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0,1 ± 0,05 0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 0 0 0 0,1 ± 0,05 0 0 0 0,04 ± 0,03

Юные, % 1 1а 1б 2 0,4 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,4 ± 0,1 0,5 ± 0,2 0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,1 0,3 ± 0,1 0,3 ± 0,1 0,3 ± 0,2 0,7 ± 0,2 0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,2 ± 0,1 0,4 ± 0,1 0,15 ± 0,07 0,2 ± 0,1 0,09 ± 0,08 0,4 ± 0,1 0,12 ± 0,06 0,07 ± 0,06 0,2 ± 0,1 0,4 ± 0,2

Палочкоядерные, % 1 1а 1б 2 4,1 ± 0,2 4,2 ± 0,2 4,0 ± 0,2 4,4 ± 0,2 4,5 ± 0,2 4,9 ± 0,3 4,0 ± 0,2 3,3 ± 0,2 5,2 ± 0,3 5,4 ± 0,4 4,8 ± 0,4 5,8 ± 0,3 3,8 ± 0,2 4,1 ± 0,2 3,4 ± 0,2 3,0 ± 0,1 3,6 ± 0,2 3,5 ± 0,3 3,6 ± 0,3 3,3 ± 0,2 3,4 ± 0,1 3,4 ± 0,2 3,4 ± 0,2 3,2 ± 0,2

Сегментоядерные, % 1 1а 1б 2 27,9 ± 0,6 28,5 ± 0,7 27,2 ± 0,9 27,5 ± 0,9 33,6 ± 0,7 33,5 ± 0,8 33,6 ± 1,3 34,1 ± 0,8 34,8 ± 0,9 35,5 ± 0,8 34,0 ± 1,7 35,0 ± 0,8 28,2 ± 0,7 27,7 ± 0,9 28,8 ± 1,2 28,2 ± 0,7 24,5 ± 0,6 24,9 ± 0,9 23,9 ± 0,8 24,1 ± 0,8 23,7 ± 0,7 23,5 ± 0,7 23,9 ± 1,4 23,8 ± 0,7

Лимфоциты, % 1 1а 1б 2 59,5 ± 0,6 59,1 ± 0,7 60,1 ± 1,1 59,5 ± 1,1 54,2 ± 0,8 53,7 ± 0,8 55,0 ± 1,4 54,8 ± 1,0 52,0 ± 1,0 51,7 ± 1,2 52,5 ± 1,7 50,9 ± 1,0 59,4 ± 0,8 59,3 ± 0,8 59,5 ± 1,6 60,0 ± 0,8 61,3 ± 0,7 60,8 ± 1,1 62,1 ± 0,6 61,0 ± 0,8 62,1 ± 0,7 62,4 ± 0,7 61,7 ± 1,4 60,1 ± 0,5

Моноциты, % 1 1а 1б 2 3,5 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,6 ± 0,3 4,0 ± 0,2 3,4 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,3 ± 0,3 3,5 ± 0,2 3,4 ± 0,1 3,3 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,5 ± 0,2 4,2 ± 0,2 4,2 ± 0,3 4,1 ± 0,3 4,2 ± 0,2 3,9 ± 0,2 4,0 ± 0,3 3,8 ± 0,3 3,8 ± 0,2 3,8 ± 0,2 4,0 ± 0,2 3,6 ± 0,3 4,1 ± 0,2

Гематокрит - часть объема крови, приходящаяся на долю эритроцитов. Гематологический анализатор определяет гематокрит с точностью до 1% изза невозможности полного удаления плазмы между клетками. Величина гематокрита у подопытных животных изменялась незначительно.

Содержание гемоглобина в крови нетелей в последние два месяца стельности и в день отела было выше, чем в послеродовой период. Максимальным оно было за 7-4 дней до отела. В это время у животных первой группы величина его была существенно больше, чем на 11-13, 24-27 и 40-45-й дни после отела (Р<0,01). Существенным было различие за 7-4 дней до отела и между группами: выше содержалось гемоглобина в крови у животных 1-ой группы (Р<0,01). В день отела различия между группами отсутствовали.

Повышение уровня гемоглобина в крови в самом конце беременности, очевидно, происходит вследствие начала дегенеративных изменений в плаценте. Среднее содержание гемоглобина в эритроците постепенно увеличивалось до 11-13-го дня послеродового периода у всех подопытных животных. Однако значения показателя варьировали в пределах 15,3-17,1 пг, что свидетельствует о не высоком содержании гемоглобина в нормальном по объему эритроците и, возможно, о слабой степени гипохромии, которая считается истинным показателем недостатка железа в организме.

Среднеклеточная концентрация гемоглобина в эритроците увеличивалась к моменту отела, а у животных 2-ой группы - к 40-45-му дню после отела. Различия между группами были существенными за 7-4 дней до отела (Р<0,01), на 11-13 и 40-45-й день после отела (Р<0,05). До родов ниже этот показатель был у животных 2-ой группы, а после отела - у животных 1-ой группы, что может быть связано с отрицательным воздействием антибиотических веществ, применяемых ими в первые дни после отела чаще, чем животными 2-ой группы.

Корреляционный анализ показал, что содержание эритроцитов и гемоглобина у подопытных животных в течение последних двух месяцев стельности существенно не изменялось, но среднеклеточный гемоглобин увеличивался (r= -0,27; P<0,01).

В этот период с увеличением количества эритроцитов средний объем их уменьшался (r= -0,39; P<0,01); уменьшалась и абсолютная ширина распределения эритроцитов (r= -0,32; P<0,01), а относительный показатель их увеличивался (r= 0,53; P<0,01). Увеличению эритроцитов сопутствовало увеличение гематокрита (r= 0,74; P<0,01), количества тромбоцитов (r= 0,27; P<0,01) и концентрации гемоглобина в крови (r= 0,73; P<0,01), но среднеклеточный гемоглобин уменьшался (r= -0,32; P<0,01).

Концентрация гемоглобина не зависела от среднего объема эритроцитов, но с объемом эритроцитов среднеклеточный гемоглобин коррелировал положительно (r= 0,75; P<0,01), а среднеклеточная концентрация гемоглобина отрицательно (r= -0,27; P<0,01).

В послеродовой период средний объем эритроцитов и гематокрит уменьшались (r= -0,24; P<0,01 и r= -0,15; P<0,05). Наблюдалось также снижение среднеклеточного гемоглобина (r= -0,17; P<0,05) и абсолютной ширины распределения эритроцитов (r= -0,22; P<0,01).

С увеличением числа эритроцитов относительная ширина их распределения, гематокрит и концентрация гемоглобина в крови увеличивались (r= 0,45, 0,76 и 0,79; P<0,01).

Средний объем эритроцитов проявлял прямую корреляционную связь с абсолютной шириной распределения эритроцитов, гематокритом, средним объемом тромбоцитов, шириной распределения тромбоцитов, процентом больших тромбоцитов, концентрацией гемоглобина в крови и среднеклеточным гемоглобином (r= 0,89, 0,47, 0,28, 0,34, 0,48, 0,32 и 0,74; P<0,01). Отрицательная связь объема эритроцитов была с относительной шириной их распределения и среднеклеточной концентрацией гемоглобина (r= -0,22 и -0,38; P<0,01).

Концентрация тромбоцитов до родов не изменялась, однако процент больших клеток уменьшался (r= 0,30 P<0,01). Меньше содержалось тромбоцитов в день отела (217,2 и 200,3 тыс./мм3), а наибольшее количество их было на 24-27-й день после отела (269,7 и 231,1 тыс./мм3 соответственно у животных 1-ой и 2-ой групп). Однако существенное различие было лишь у животных 1-ой группы. Более высокое содержание тромбоцитов у них наблюдалось во все периоды исследования, но достоверным различие между группами было только за 2 мес. до отела (P<0,05).

В послеродовой период отмечалось уменьшение среднего объема тромбоцитов (r= -0,16; P<0,05), а другие изменения не были существенными. Проявлялась положительная корреляция концентрации тромбоцитов со средним и компактным объемом их, а также с процентом больших клеток (r= 0,18, 0,50 и 0,16; P<0,05-0,01).

У первотелок с задержанием последа морфологические показатели крови и концентрация гемоглобина в конце стельности и после отела изменялись в пределах нормы. В конце стельности и в день отела гемоглобина содержалось больше, чем в послеродовой период. Максимальным содержание его было за 7-4 дней до отела. По мере приближения родов наблюдалось увеличение среднеклеточного гемоглобина (P<0,01) и числа лейкоцитов (P<0,05), особенно сегментоядерных нейтрофилов (P<0,01). Количество палочкоядерных нейтрофилов и лимфоцитов уменьшалось (P<0,05 и P<0,01). Концентрация тромбоцитов не изменялась, однако процент больших клеток также уменьшался (P<0,01). В послеродовой период, напротив, отмечалось снижение лейкоцитов (P<0,01), причем наиболее существенное - палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов (P<0,01), при одновременном увеличении эозинофилов и лимфоцитов (P<0,01). Средний объем эритроцитов и гематокрит уменьшались (P<0,01 и P<0,05). Снижались также среднеклеточный гемоглобин (P<0,05) и абсолютная ширина распределения эритроцитов (P<0,01).

Различия между группами по изученным показателям, как правило, не были существенными. Однако среднеклеточная концентрация гемоглобина в эритроците после отела ниже была у животных 1-ой группы, что может быть связано с более частым применением антибиотических веществ в первые дни после отела.

При консервативном способе лечения первотелок основные критерии плодовитости соответствовали стандарту. Наилучшие показатели достигнуты при использовании суппозиториев и комплекса антибиотических веществ (1а группа). Многократное применение тилозинокара для устранения осложнений хотя и обеспечивало высокий уровень оплодотворяемости после первого осеменения, но задерживало проявление половой цикличности и удлиняло период от отела до оплодотворения (1б группа). После мануального отделения последа срок до первого осеменения увеличивался, снижалась оплодотворяемость, удлинялся интервал от отела до оплодотворения.

Воспроизводительная способность животных проявляла тесную корреляционную связь с рядом изученных показателей крови. С увеличением среднеклеточной концентрации гемоглобина до отела интервал до оплодотворения уменьшался. Уменьшение интервала было связано также с увеличением компактного объема тромбоцитов и содержания сегментоядерных нейтрофилов на 40-45 день после отела. Увеличение юных нейтрофилов в послеродовой период и миелоцитов на 40-45 день после отела сопровождалось увеличением этого показателя и индекса осеменения.

Характер этих связей указывает на важность обеспечения матки до отела кислородом и интенсивности проявления клеточного иммунитета после отела для обеспечения метаболических процессов и структурных изменений в половых органах и последующего оплодотворения.

(Поступила в редакцию 23.03.10)

1. Бегунов, В.С. Эффективность различных препаратов при медикаментозном лечении задержания последа у коров / В.С. Бегунов // Исследования молодых ученых в решении проблем животноводства: сб. науч. тр. Междунар. науч.-практ. конф. молодых ученых и преподавателей сельскохозяйственных учебных заведений и научно-исследовательских учреждений. Витебск, 2001. С. 9.

2. Валюшкин, К.Д. Акушерско-гинекологическая диспансеризация коров и нетелей: учеб. пособие / К.Д. Валюшкин, А.Р. Камошенков. Смоленск, 2005. С. 56-58.

3. Валюшкин, К.Д. Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных / К.Д. Валюшкин, Г.Ф. Медведев. Минск: Ураджай, 2001. С. 528-529.

4. Карпуть, И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных / И.М. Карпуть. Минск: Ураджай, 1986. 183 с.

5. Копытин, В.К. Основы повышения плодовитости коров / В.К. Копытин, В.С. Шипилов. Смоленск, 2004. С. 54.

6. Кудрявцев, А.А. Клиническая гематология животных / А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева. М.: Колос, 1974. 399 с.

7. Медведев, Г.Ф. Совершенствование клинического (ректального) метода исследования воспроизводительных органов. Интенсиф. произв. мол. и говяд. // Сб. науч. тр. БСХА. 1985. Вып. 130. С. 56-60.

8. Методические указания по комбинированному лечению задержания последа у коров: рекомендации / Г.Ф. Медведев, Н.И. Гавриченко, В.С. Бегунов [и др.]. Молодечно: ОДО Евроконтакт, 2005. 12 с.

9. Романенко, Н.И. Физиолого-биохимический статус высокопродуктивных коров холмогорской породы / Н.И. Романенко [и др.] // Селекция сельскохозяйственных животных на устойчивость к болезням и повышение естественной резистентности / ВНИИПЛЕМ. М., 1989. С. 113-120.

10. Bearden, H. Joe. Applied Animal Reproduction / H. Joe Bearden, John W. Fuquay // 3rd ed. 1992. 352 p.

11. Retained fetal membranes in large animals // The Merck Veterinary Manual. 2003. P. 74-79.

12. Mollo, A. The use of oxytocin for the reduction of cow placental retention, and subsequent endometritis / A. Mollo, M.C. Veronesi, F. Cairoli, F. Soldano // Anim. Reprod. Sci. 1997. Vol. 48. №1. P. 47-51.

13. Geoffrey, H. Veterinary Reproduction & Obstetrics / Geoffrey H. Arthur, David E. Noakes, Harold Pearson, Timothy J. Parkinson // Seventh Edition. W.B. Saunders Company Ltd. 1996. P. 291-301.

14. Arthur?s Veterinary Reproduction and Obstetrics / Edited David E. Noakes, Timothy J. Parkinson, C.W. Gary. England. Eighth Edition. 2001. W.B. Saunders Comp. Ltd. 868 р. (Reprinted 2007)